Физиология крови 2 страница

В исключительных случаях, когда нельзя обеспечить вышеперечисленные условия транспортировки, рыбу, планктонные и бентосные организмы консервируют 70% этиловым спиртом. Патологический материал для гистологических исследований фиксируют в 10%-ном растворе нейтрального формалина, жидкостях Карнуа или Буэна.

Отобранные материалы этикетируют, упаковывают в водонепроницаемую тару, опечатывают и высылают нарочным в ветеринарную лабораторию или другие аккредитованные учреждения. В сопроводительном письме, кроме данных обследования водоема и предварительного диагноза, обязательно указывают предполагаемое токсическое вещество или группу веществ, а также другие виды исследований, которые необходимо провести для постановки окончательного диагноза.

Лабораторные исследования. Материал, поступивший в лабораторию, разделяют на две части: одну часть исследуют сразу, а вторую хранят в холодильнике или в консервированном виде для повторных анализов. Направление лабораторных исследований и подбор методик зависит от конкретной ситуации на водоеме и предполагаемого диагноза. К группе обязательных относятся органолептические, гидрохимические и химико-токсикологические исследования воды и органов рыб, а дополнительных - исследования грунта, беспозвоночных животных и растительности на наличие предполагаемого ядовитого вещества.

Органолептические исследования основаны на свойстве многих химических веществ издавать запахи, которые определяют по пятибалльной системе.

Органолептическое исследование рыбы на наличие постороннего запаха и привкуса проводят пробой варки. Желательно определять запахи в мясе и внутренних органах рыб, проваривая их совместно или раздельно. Берут около 100 г мелко нарезанных кусочков непотрошеной рыбы или отдельно мяса и внутренних органов, заливают двойным количеством воды и кипятят 5 минут в колбе, прикрытой стеклом. После закипания воды проверяют запах, привкус и прозрачность бульона.

По специфическому запаху можно определить фенол и его производные (монохлорфенол, гваякол, мононитробензол, бутилбензол, мононитротолуол, толуидин, хинолин, нафтол, нафтиламин и др.), нефть и продукты ее перегонки (бензин, керосин, соляровое масло и др.), смолы и дегти, канифоль, терпены, камфару, тимол, ментол, эфирные масла, смоляные кислоты, альдегиды (формальдегид, параформ, метальдегид), хлор- и фосфорорганические пестициды и др.

Гидрохимические исследования включают проведение полного гидрохимического анализа. Для проведения гидрохимических исследований используют: "Методики гидрохимических исследований проб воды из рыбохозяйственных водоемов" (1983) и ОСТ 15.372-87.

При проведении химико-аналитических исследований рыб необходимо учитывать локализацию ядовитых веществ и их метаболитов. Так, тяжелые металлы (ртуть, кадмий, никель, кобальт и др.) в больших количествах обнаруживаются в слизи, коже, жабрах и внутренних органах. Хлорорганические пестициды концентрируются в висцеральном жире, половых органах, головном мозге и в меньшем количестве в мышцах, жабрах, паренхиматозных органах. Фосфорорганические соединения локализуются в паренхиматозных органах и в жировых отложениях. Детергенты больше встречаются в жабрах, стенке пищеварительного канала и меньше в гонадах.

При невозможности набрать необходимую массу проб вышеперечисленных органов, исследуют сборные пробы: целые тушки мелких рыб, а у крупных экземпляров - отдельно пробы жира, паренхиматозных органов, скелетной мускулатуры и жабр. В случае получения отрицательных или сомнительных результатов анализа воды и рыбы дополнительно исследуют сборные пробы грунта, бентоса, зоопланктона или водных растений, которые избирательно концентрируют определенные токсические вещества.

Химико-аналитические исследования проводят утвержденными методами – «Лабораторные методы в ветеринарии», «химико-токсикологические методы».

При необходимости проводят также гематологические, биохимические, гистологические исследования, исключают инфекционные и инвазионные болезни. Гематологические исследования позволяют установить качественные и количественные изменения форменных элементов, лейкограммы. Форменные элементы крови при токсикозах подвергаются дистрофии и некробиозу. В эритроцитах регистрируют анизоцитоз, пойкилоцитоз, шистоцитоз, полихромазия и другие патологические изменения.

Биохимические исследования. Чувствительными индикаторами, отражающими изменения деятельности различных функциональных систем под влиянием токсических веществ, являются содержание сахара в крови, гликогена в печени, белковый спектр сыворотки крови, активность ферментов и др.

Гистологическими исследованиями при отравлениях чаще обнаруживают дистрофические, некробиотические и другие деструктивные изменения в жабрах, паренхиматозных органах, особенно в печени и почках, головном мозге и реже в других органах. Воспалительная реакция при них менее выражена и чаще наблюдается при осложнении токсикозов заразными болезнями.

Постановка биопробы. Для доказательства токсичности загрязненной водной среды ставят биопробу на рыбах непосредственно в водоемах ("рыбная" проба) или в аквариумах. В первом случае опыты ставят в долевых садках, которые устанавливают в водоем, помещают в них чувствительных к токсикантам рыб (окунь, ерш, форель и др.) и ведут наблюдения за их поведением и гибелью в течение 4-5 суток. Подобные исследования можно провести в аквариумах или бассейнах, заполнив их водой из водоемов или сточной водой в разных разведениях и др.

Биотестирование токсичности воды проводят также постановкой лабораторных опытов на чувствительных тест-объектах (дафниях, инфузориях тетрахимена или стилонихия) по ГОСТ СССР ОКСТУ0017 "Вода. Определение токсичности на инфузориях" (1990); "Методическое руководство по биотестированию воды. РД 118-02-90" (1991).

Токсичность нативного патологического материала или экстрактов ядов из органов рыб определяют на лабораторных животных (рыбах, мышах, крысах, кошках, лягушках, насекомых) путем скармливания, парентерального введения или прямого контакта с патологическим материалом. Выбор животных и методики постановки биопробы зависит от характера предполагаемого ядовитого вещества. Например, при подозрении на пестицидное загрязнение опыты ставят на комнатных мухах, дрозофилах, комарах, используя следующие методы.

Метод сухой пленки. Пестициды извлекают из исследуемого образца ацетоном. Экстракт фильтруют в чашку Петри, испаряют и в чашку помещают 20-30 насекомых. Появление у всех подопытных насекомых нервно-паралитических симптомов и отсутствие их у контрольных указывает на наличие ядохимикатов. Метод кормления. Внутренние органы отравленных рыб растирают в ступке с сахарным песком и скармливают насекомым. Проба считается положительной, если все насекомые погибают с типичными признаками судорог и параличей.

Метод водных взвесей заключается в выдерживании (экспонировании) комаров, дафний, циклопов, инфузорий или рыб в водных суспензиях органов.

Диагноз на отравление рыб ставят комплексно на основании анамнестических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований.

В заключении по лабораторным исследованиям должны быть указаны химические вещества и их количество, возбудители болезней и изменения в организме, найденные или не обнаруженные применяемыми методами анализа.

Для постановки окончательного диагноза на отравление решающее значение имеет обнаружение ядовитых веществ или их метаболитов в воде, органах рыб, биологических объектах, грунте, а также выявление специфических изменений в организме рыб. Однако, в силу большого разнообразия химических веществ, поступающих в водоем, при оценке полученных результатов необходим дифференцированный подход.

В первую очередь, необходимо критически оценивать данные химико-токсикологических исследований, поскольку даже отрицательный результат во многих случаях не является доказательством отсутствия токсикоза и, наоборот, обнаружение токсического вещества не всегда служит абсолютным указанием на отравление. В этих случаях учитывают стойкость, миграционные способности, пути метаболизма, кумулятивные свойства и фоновое содержание обнаруженного вещества во внешней среде.

В ряде случаев необходимо иметь в виду возможность эндогенного появления в организме некоторых веществ. Например, в органах рыб содержатся небольшие остатки аммиака как конечного продукта азотистого обмена. При гнилостном разложении тканей могут образовываться цианиды и сероводород.

Многие химические вещества (фосфорорганические пестициды, цианиды, галогены и другие химические соединения) быстро разлагаются в водной среде и организме гидробионтов. Они обнаруживаются только в ранние сроки интоксикации, а затем выявляются их следовые количества и метаболиты.

По данным гидрохимического анализа косвенно можно судить о загрязнении водоемов коммунально-бытовыми и животноводческими стоками, минеральными удобрениями и другими токсикантами, влияющими на гидрохимический режим. Ведущими показателями их действия являются: резкий дефицит кислорода и увеличение аммиака, сероводорода, нитритов и других продуктов разложения органических веществ. Азотные удобрения сильно повышают содержание в воде аммиака, нитратов, нитритов.

Контрольные вопросы.

1.Вода и его физико-химические свойства, разновидности льда.

2.Классификация воды по физическим и химическим свойствам.

3.Что такое абиотические и биотические факторы среды обитания?

4.Влияние на организм рыб абиотических и биотических факторов среды

обитания.

5.Назовите и охарактеризуйте поверхностные водные артерии Республики

Казахстан.

6.Водная токсикология- его цели и задачи.

7.Какие вещества называются токсикантами, ядами. Их виды и механизм

действия?

8.Загрязнение воды, окружающей среды и влияние их их на физиологиче-

ское состояние обитаталей.

9.Пути поступление токсикантов в отрытые водные бассейны,сточные воды,

их характеристика.

10.Загрязнения водной среды солями нефтью и, нефтепродуктами

детергентами, радиоактивными веществами.

11.Отравление рыб солями тяжелых металлов, механизм его клинического

проявления и обратимость процессов.

12.Как проявляются характерные клинические признаки при отравлении

органическими ядами, пестицидами?

13.Назовите пути проникновения ядов и формы отравления рыб.

14.Что такое адаптация и кумуляция при отравлении рыб?

15.Каким образом влияют факторы внешней среды на действие ядов?

16.Какими методами оценивают гидрохимический режим водоемов?

17.Укажите существующие методы диагностики отравления рыб.

Глава 2

2.1 Кровь, крово – лимфообращение

Кровь от сердца поступает в жабры, обогащаясь кислородом, и разносится по кровеносной системе. Кровеносная система рыб состоит из сердца и сосудов. Сердце у них двухкамерное (имеется предсердье и желудочек), направляет венозную кровь через брюшную аорту к жабрам. Вдоль позвоночника проходят самые мощные кровеносные сосуды. У рыб только один круг кровообращения.

а) Кровь и ее образования. У многоклеточного организма клетки тканей и органов непосредственно с внешней средой не соприкасаются. Те клетки, которые имеют соприкосновение с внешней средой, например, клетки кожного покрова, самостоятельно не могут черпать питательные вещества из этой среды.

У многоклеточного организма между внешней средой и каждой клеткой тканей и органов имеется посредник - кровь и лимфа, которые составляют внутреннюю среду организма. Клетки не соприкасаются непосредственно с кровью, но соприкасаются с лимфой, кровь движется внутри замкнутой системы кровеносных сосудов. Клетки омывает та жидкость, которая поступает из крови через стенки капилляров и носит название тканевой жидкости. Циркулируя в интерстициальных щелях тканей, тканевая жидкость приносит к клеткам питательный материал и уносит с собой продукты распада. Тканевая жидкость затем попадает в лимфатические сосуды и тогда получает название лимфы.

Кровь – «gem» по многообразию функций можно назвать жидким органом, замкнутым в сердечно-сосудистую систему и находящимся в постоянном движении. Кроветворные органы рыб представлены головной почкой, селезенкой, тимусом. В процессе кроветворения у рыб, кроме специализированных органов участвуют стенки кровеносных сосудов. Количество форменных элементов, а именно эритроциты у рыб одного и того же вида изменяются в зависимости от пола, возраста и условий внешней среды. Количество крови у рыб меньше, чем у всех остальных позвоночных животных (1,1,- 7,3% массы тела, в том числе у карпа 2,0 - 4,7%, сома—до 5, щуки —2, кеты -1,6, тогда как у млекопитающих—6,8% в среднем). Это связано с горизонтальным положением тела (нет необходимости проталкивать кровь вверх) и меньшими энергетическими затратами в связи с жизнью в водной среде. Вода является гипогравитационной средой, т. е. сила земного притяжения здесь почти не сказывается. У пластиножаберных рыб объем крови составляет около 5% веса тела, а у костистых – меньше, чем у всех позвоночных, обычно 1,5-3%. Цвет крови изменяется в связи со степенью насыщения кислородом. Кровь, богатая кислородом называется артериальной, имеет ярко красный оттенок, а бедная кислородом, но насыщенная углекислым газом -венозная – более темный, темно вишневый цвет.

Удельный вес крови равняется 1,050-1,060, эритроциты имеют удельный вес 1,090, а плазма-1,030. Плазма крови обладает относительно более постоянным удельным весом. Количество эритроцитов значительно влияет на удельный вес.

Вязкость крови сравнивается вязкостью воды. Если вязкость воды принять за 1, то вязкость цельной крови будет 3-5. Вязкость крови тем выше, чем больше в ней содержаться форменных элементов, в особенности эритроцитов.

Кровь рыбы состоит из плазмы, эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов, количество воды составляет 92%, органических веществ 7,5%, минеральных веществ 1,5%.

К неорганическим веществам относятся соли. В организме рыбы существует постоянный солевой обмен и регуляция качественного и количественного состава солей. Соотношение ионов в крови настолько важно для рыб, что оно легче переносит колебания общей солености (когда отдельные ионы уравновешены), чем нарушения соотношения ионов. От ионного состава сильно меняются физические и коллойдно – химические свойства белков. Коллойдно – химические свойства белков требуют определенного состава среды, в которой осуществляется жизнедеятельность цитоплазмы. (Рис. 19)

Рис.19. Белковые фракции сыворотки крови рыб; 1-альбумины; 2-альфа; 3-бетта; 4-гамма глобулины

Б ) Осмотическое давление крови – один из важнейших факторов, поддерживающих постоянство внутренней среды. Кровь оказывает влияние на все клетки тела. Водный обмен клеток зависит, прежде всего от градиента осмотического давления внутри клеток и крови. Величина осмотического давления зависит от концентрации растворенных в ней веществ и от температуры воды, умлекопитаюших данный показатель равен 7 атмосферам. Физиологические особенности организма рыбы позволяют ей освобождаться от избытка воды. Однако осмотическое давление крови нельзя понимать, как абсолютное постоянство. В некоторых пределах оно может изменятся без вреда для организма и только при изменении, за физиологически допустимые пределы, рыба погибает.

Минеральные соли в значительной мере определяют осмотическое давление, величина которого имеет важнейшее физиологическое значение. Если эритроциты погрузить в раствор NaCI с более высоким осмотическим давлением (гипертонический раствор), чем плазма крови, они сморщиваются и принимают неправильную форму. Обратное влияние оказывает раствор с меньшим осмотическим давлением (гипотонический); в нем вода из раствора переходит в эритроциты, которые увеличиваются в объёме и разрушаются, наблюдаются процессы гемолиза.

Гемолиз – процесс, при котором отмечается полное или частичное разрушение оболочки эритроцитов и выход гемоглобина в плазму. Причинами гемолиза могут быть несколько факторов абиотического и биотического характера. Гемолиз происходит в случае, когда разница осмотического давления внутри эритроцитов и в растворе достаточно большой величины.

Часто в работе используют изотонические растворы, в состав которых входят определенные вещества в граммах, растворенные в 1л дистиллированной воды, как это показано в таблице 7.

Изоосмотическими растворами называются растворы с равными осмотическими концентрациями. Изотоническим называют такой раствор, в котором клетка не изменяет своего объема. Изоосмотический раствор вещества, отсутствующего в клетке, но способного в нее проникнуть, не будет изотоническим. Например, эритроциты в 0,3 М растворе сахарозы, для которого они непроницаемы, не изменяют своего объема, в то время как в изотоническом растворе мочевины они набухают так, как мочевина проникает внутрь клетки, а за ней следует вода. Термин «изоосмотический» более подходит к растворам с равными осмотическими концентрациями, чем термин «изотонический». Подобным же образом раствор, осмотическая концентрация которого ниже, чем у данного раствора, называется гипосмотическим, а раствор, осмотическая концентрация которого выше – гиперосмотической.

Изменение осмотического давления ткани происходит под влиянием обмена веществ. Клетки потребляют крупномолекулярные питательные вещества: аминокислоты, углеводы, жиры, а выделяют мелкомолекулярные конечные продукты обмена. Поэтому осмотическое давление возрастает в жидкостях, оттекающих от работающего органа. Венозная кровь имеет повышенное осмотическое давление по сравнению с артериальной.

Незначительная часть осмотического давления зависит от коллоидов плазмы крови (25-30 мм ртутного столба). Осмотическое давление, обусловленное коллоидами- белками плазмы крови, называется онкотическим. Онкотическое давление противостоит кровяному давлению в капиллярах. В начале артериальных капилляров кровяное давление выше, поэтому вода из крови идет в ткани. В венозном конце капилляров, наоборот, онкотическое давление выше, вследствие чего вода идет из тканей в кровь. Если понижено онкотическое давление, то поступление воды в ткани увеличивается, появляется отёк тканей.

Таблица 7 - Изотонические растворы

Составляющие раствора	Растворы для лягушек	Растворы для теплокровных
Рингера	Локка	Гедона	Адлера	Тироде	Рингера	Рингера- Локка	Тироде
Натрия хлорида	6,0	9,0	6,0	5,5	8,0	9,0	9,0	8,0
Калия хлорида	0,01	0,2	0,3	0,4	0,2	0,42	0,3	0,2
Кальция хлорида	0,02	0,2	0,1	0,4	0,2	0,24	0,2	0,2
Магния хлорида	-	-	0,3	0,25	0,1	-	-	0,1
Натрия фосфорнокислого	-	-	0,5	0,13	0,05	-	-	0,05
Гидрокарбоната натрия	0,1	0,2	1,5	3,5	1,0	0,2	0,2	0,2
Глюкозы	-	1,0	1,0	1,5	1,0	-	1,0	1,0

Сохранение постоянства осмотического давления крови достигается путем деятельности многих органов: почки и кожи. Выделительные органы являются мощными регуляторами осмотического давления крови, обеспечивающими сохранение его постоянства.

В) Реакция крови - определяется концентрацией в крови водородных (Н) и гидроксильных(ОН) ионов. Раствор имеет кислую реакцию, если в нем содержится избыток Н-ионов; он становится щелочным при увеличении концентрата ОН- ионов.

Активная реакция крови определяется неорганическим ее составом (углекислотой, углекислыми солями). РН чистой дистиллированной воды, как нейтральной среды,-7,07. Кровь имеет РН- 7,36, т.е. реакция крови слабощелочная.

Величина реакций крови имеет важное биологическое значение, так как клеточные процессы протекаютнормально толькопри определенном РН.

Сдвиги достаточно значительные в сторону кислотности или щелочности, резко нарушают физиологические процессы в организме. Активная реакция крови поддерживается на постоянной величине, чему способствуют так называемые буферные свойства крови. Благодаря буферным свойствам, кровь может долго удерживать постоянство активной реакции. К буферам крови, т.е. веществам, которые защищают кровь от притока кислот и щелочей и этим способствуют сохранению реакции крови на постоянном уровне, относятся двууглекислые соединения (бикарбонаты), затем фосфаты и белки. Всего их четыре: гемоглобиновая, белковая (плазменная), фосфатная и карбонатная. Основная буферная способность крови обеспечивается гемоглобином, в плазме крови карбонатной системой.

Накоплению кислот в крови и сдвигу ее реакции препятствуют щелочные соли. Эти щелочные соли образуют так называемый щелочной резерв крови. Уменьшение щелочных резервов, способствуют уклонению реакции в кислую сторону. Поэтому уменьшение щелочного резерва крови определяет собой ацидоз, а его увеличение- алкалоз.

2.2 Морфологический состав крови. Морфологическая и биохимическая характеристика крови различна у разных видов в связи с систематическим положением, особенностями среды обитания и образа жизни. Внутри одного вида эти показатели колеблются в зависимости от сезона года, условий содержания, возраста, пола, состояния особей. Красные кровяные клетки, белые кровяные клетки и кровяные пластинки или тромбоциты, являются форменными элементами крови. Каждая форма клеток крови выполняет определенную роль. (Рис. 20)

2.2.1Красные кровяные клетки - эритроциты, являются ядерными клетками. У птиц, амфибий, рептилий рыб эритроциты овальной формы, под микроскопом зеленовато-желтоватого цвета и содержат ядро. В профиль эритроциты представляются двояковогнутыми, т.е. к центру имеют сужение, а к периферии-расширение, и напоминают цифру восемь.

Эритроцит состоит из нежной сетчатой стромы и поверхностного слоя - оболочки. Оболочка эритроцита состоит из липойдов; она полупроницаема, т.е. проницаема для воды и некоторых веществ, например глюкозы, мочевины, и непроницаема для нейтральных солей, катионов, щелочей. Благодаря этому, эритроциты удерживают свой специфический состав, особенно, состав солей. В гипотонических растворах солей, с концентрацией соли меньшей, чем в эритроцитах, вследствие проникновения в клетки воды, происходит разрушение эритроцитов с выходом в раствор гемоглобина (гемолиз). В гипертоническом растворе они теряют воду и сморщиваются, принимая форму тутовой ягоды.

В изотоническом растворе, т.е. в растворе с концентрацией NaCl = 0.65-0.9%, равной концентрации солей в эритроците и плазме, физико-химическое состояние клеток не меняется. Поэтому раствор хлористого натрия в концентрации 0,65-0,9% принято называть физиологическим для хладнокровных.

Эритроциты эластичны, растяжимы и гибки, в силу чего легко изменяют форму, особенно при переходе через капилляры. Общий состав эритроцитов следующий: воды 60% и сухого вещества 40%. Если принять сухое вещество за 100%,то 90% из него приходится на долю гемоглобина, а остальные 10% состоят из белков, липоидов, глюкозы и минеральных веществ. Общая поверхность всех эритроцитов крови достигает больших величин; так, например, поверхность эритроцитов во всей крови у коровы равна 16000м²т.е. превышает 1,5га. Огромная поверхность определяет участие эритроцитов в процессах, связанных с поглощением кислорода. Действительно, эритроциты являются переносчиками кислорода из легких и жабр к клеткам тканей и органов. Кроме основной транспортной функции-переноса кислорода, эритроциты участвуют в обмене веществ абсорбируя и перенося на своей поверхности отдельные аминокислоты, а также глюкозу из кишечника в печень.

Для подсчета эритроцитов применяются специальные счетные камеры Тома-Цейсса, Брюкера, Горяева. Эритроциты образуются в костном мозгу из особых ядерных клеток-эритробластов; живут в крови они около 30 дней и постоянно распадаются в селезенке.

У рыб эритроциты крупнее, а их количество в крови меньше, чем у высших позвоночных, лейкоцитов же, как правило, больше. Это связано, с одной стороны, с пониженным обменом веществ организма рыб, а с другой—с необходимостью усилить защитные функции крови, так как окружающая среда изобилует болезнетворными организмами. В 1 мм³ крови количество эритроцитов составляет (млн): у приматов-9,27; копытных-11,36; китообразных - 5,43; птиц 1,61 - 3,02; костистых рыб-1,71 (пресноводные), 2,26 (морские), 1,49 (проходные). Количество эритроцитов у рыб колеблется в широких пределах, прежде всего в зависимости от их подвижности: у карпа 0,84-1,89 млн/мм³ крови, щуки -2,08, пеламиды-4,12млн/мм³.

2.2.2 Гемоглобин, его состав и свойства. Эритроциты выполняют функцию переносчика кислорода, благодаря содержанию в своем составе гемоглобина. Гемоглобинотносится к сложным белкам хромопротеидам, способен легко связывать и отщеплять кислород, превращаясь соответственно в окисленный (НbО₂) и восстановленный гемоглобин (Нb)

Гемоглобин представляет собой комплексное вещество, состоящее из белка глобина (94%) и небелкового вещества, содержащего в молекуле железо-гемохромогена (4,5%).

Наиболее характерным свойством гемоглобина является его способность давать с кислородом легко диссоциированное соединение - оксигемоглобин.

Различные состояния гемоглобина можно различить при помощи спектрального анализа. Пропуская луч света через раствор, содержащий около 0,6% оксигемоглобина, в спектроскопе можно обнаружит две темные полосы поглощения в желто-зеленой части спектра (между фраунгоферовыми линиями D и E).

Определение количества гемоглобина представляет большой интерес с точки зрения его физиологического значения. Приборы, служащие для количественного определения гемоглобина, называются гемометрами. Количество гемоглобина производится путем сравнения цвета стандартного раствора с определенным количеством исследуемой крови (колориметрический метод). Для такого определения обычно применяют гемометр Сали.

Соединение гемоглобина с окисью углерода. Для гемоглобина характерна его способность вступать в соединение с газами. Соединение гемоглобина с окисью углерода, или угарным газом CO2. В соединение с окисью углерода гемоглобина вступает еще легче, чем с кислородом, образуя карбоксигемоглобин. При действии на оксигемоглобин окисляющих веществ (железосинеродистый калий, перекись водорода, озон и др.) гемоглобин, отдавая свой кислород, восстанавливается, а затем вновь окисляется с образованием уже не оксигемоглобина, а бурого вещества называемого метгемоглобином.

Кровь рыб окрашена гемоглобином в красный цвет, но есть рыбы и с бесцветной кровью. У таких рыб кислород в растворенном состоянии переносится плазмой. Так, у представителей семейства Chaenichthyidae (из подотряда нототениевых), обитающих в антарктических морях в условиях низкой температуры, кровь лишена гемоглобина, почти прозрачна.

Так, в водах Антарктики обитают уникальные белокровные рыбы которые были исследованы норвежским ученым Рудом тридцать лет назад. Тогда он установил, что в крови крокодиловой белокровки железа — составной части гемоглобина — в 25 раз меньше, чем у обычных рыб. Зато сердце ее втрое больше, чем у родственных ей нототениевых рыб с красной кровью. Соответственно больше и объем снабжающей тело крови. Любопытно, что белокровка дышит в основном не жабрами, а через кожу, густо усеянную капиллярами. Но самое удивительное: кровь этих рыб не замерзает. Воды у Южного полюса большую часть года имеют температуру около минус 1,9°, и только сравнительно высокая соленость не позволяет им превратиться в лед. Что же за необычное существо белокровка, если известно, что кровь других рыб замерзает при 0,5—0,8°. В белой крови рыб есть вещества, понижающие температуру ее замерзания. Молекулы вещества состоят частично из белков, частично из сахаров. И именно в сахарах содержатся в больших количествах те гидроксильные группы, которые не дают ей замерзнуть. Они же играют важную роль в хорошо известном всем автомобилистам антифризе, который заливают зимой вместо воды в радиаторы машин.

Кроме белокровки, в семействе нототениевых есть и другие рыбы, прекрасно приспособившиеся к жизни в воде, температура которой близка к точке замерзания. Температура замерзания крови разновидности пестряка — минус 1,98°, полосатика — минус 2,01°, а у большого широколобика она еще ниже — минус 2,07°.

Дата добавления: 2014-11-25