Обнаружение гликогена и гранулезы

Обнаружение волютина

1. Фиксированный мазок окрасить метиленовым синим. Волютиновые зерна окрашиваются в интенсивно синий, цитозоль – в голубой цвет.

1. Приготовить препарат «раздавленная капля».

2. Окрасить раствором Люголя: гранулезу – стандартным; гликоген – более концентрированным.

Обнаружение жира

1. Каплю суспензии бактерий смешать с каплей 40-процентного формалина на предметном стекле.

2. Через 5 минут добавить каплю метиленового синего.

3. Через 10 минут добавить каплю судана III.

4. Микроскопировать под покровным стеклом. Цитоплазма приобретает синий цвет, капли жира – розовый.

Работа 21. Идентификация бактерий

1. Составить карту свойств бактерий, выделенных в чистой культуре, по форме:

Морфологические свойства

Культуральные свойства. Характеристика колоний.

Физиологические свойства

Форма, расположение, споры, капсулы.

Окраска по Граму, включения

Подвижность

Размер

Форма

Поверхность

Цвет

Край

Консистенция

Тип дыхания (по уколу в МПА)

Протеолитические свойства

Свертывание молока

Рост на картофеле

Пузырьки газа на МПБ

Наличие желатиназы

1. Провести идентификацию по Ленису. См. список литературы ().
2. Сверить точность определения по Берги.
3. Занести ход определения и характеристику вида в лабораторный журнал.

Тема 6. ИЗУЧЕНИЕ ВЕТВЯЩИХСЯ И ОБРАЗУЮЩИХ ПЛОДОВЫЕ ТЕЛА ФОРМ БАКТЕРИЙ МЕТОДОМ ЭЛЕКТИВНЫХ КУЛЬТУР

Работа 22. Миксобактерии

Оборудование: чашки Петри, колбы со стерильной дистиллированной водой, пипетка, пинцет, предметные стекла, спиртовка, петли, скальпель, препа­ровальные иглы, навозный агар, кроличий помет, однопроцентный раствор фук­сина.

Ход работы

Закладка элективной культуры миксобактерий

1. Вскипятить 10 г свежего кроличьего помета в 0,1 л водопроводной воды, профильтровать через ватный фильтр.
2. К фильтрату добавить 0,5 г крахмала и 2 г агара. Разлить. Стери­лизовать при 1 атм. 30 минут.
3. Навозный агар разлить в чашки Петри, соблюдая стерильность, дать застыть,
4. Заразить среду небольшим количеством кроличьего помета с по­мощью пинцета.
5. Выращивать при t = 25-28°C в течение 14 дней, увлажняя помет дистиллированной водой, чтобы избежать развития плесневых грибов.

Рис. 10. Плодовые тела и формы микроспор и вегетативных клеток некоторых миксобактерий

Изучение культуры

1. Для изучения характера роста скальпелем вырезать кусочек агара с колониями, nepeнести на предметное стекло, микроскопировать при малом увеличении (рис. 10).
2. Дли изучения морфологии клеток с колонии взять мазки, окра­сить, микроскопмровать с иммерсионной системой, Под микроскопом видны палочковидные клетки и округлые микроцисты миксобактерий.
3. Проследить цикл развития миксобактерий (рис 11). Зарисовать наблюдаемые формы.

Рис. 11. Цикл развития миксобактерий

Работа 23. Микобактерии

Оборудование: спиртовка, петли, предметные стекла, кристаллизатор с подставкой, промывалка с водой, стерильный парафин, краситель (фуксин или генцианфиолет), стерильные конические колбы, гашетки. Для элективной мине­ральной среды: NН₄ C1 - 0,05 г,К₂НР0₄ - 0,05 г, MgSO4 - 0,02 г, СаСО3 - 0,02 г, воды- 100 мл, почва.

Ход работы

Закладка элективной культуры

1. Питательную среду стерилизовать при 1 атм. 20 минут, разлить в конические колбы слоем 1,5-2 см.

2. Пипеткой внести капли парафина, t

3. Заразить небольшим количеством почвы.

4. Выращивать в течение 2 недель при t = 28-30°С.

Изучение культуры

Рис. 12. Микобактреии

1. Диск парафина, переворачивая, перенести на предметное стекло.
2. Петлей снять с диска часть налета, приготовить мазок.
3. Фиксируют, окрашивают, микроскопируют с иммерсионной системой, отмечая разнообразия форм клеток.

Работа 24. Актиномицеты

Оборудование: стерильные чашки Петри, предметные и покровные стекла, препаровальные иглы, скальпель, почва, сито, 70-80-процснтная уксусная кислота, голодный агар, 60-процентный этанол со следами аммиака, однопроцентный фуксии, промывали с водой.

Ход работы

Закладка элективной культуры

1. Разлить голодный агар в чашки Петри

2. С помощью сита равномерно рассеять мелкозем по поверхности агаровой пластинки. Наиболее благоприятна навеска до 20 мг.

3. Проращивать культуру при t = 25-28°С в течение 8-10 суток.

Рис. 13. Мицелии: актиномицета(1) и гриба (2); 3 – Формы спороносцев у актиномицетов

Изучение культуры

1. Вырезать блоки агара с колониями, перенести на предметное стекло.

2. Микроскопировать при малом увеличении. На препарате разли­чается светлый воздушный и субстратный мицелий, гифы-спороносцы (рис. 13).

3. Для изучения процесса спорообразования изготовить препарат «отпечаток», пользуясь иммерсионной системой.

4. Зарисовать наблюдаемые формы.

Тема 7. ТРАНСФОРМАЦИЯ МИКРООРГАНИЗМАМИ СОЕДИНЕНИЙ АЗОТА

Работа 25. Аммонификация белка

Оборудование: весы, разновесы, колба 100-150 мл, дистиллированная во­да, почва, водяная баня, электроплитка, спиртовка, петли, пинцет, предметные стекла, целлофан, резиновые колечки, чашки Петри, красная лакмусовая бумага, полоски фильтровальной бумлки, пропитанные 10-процентным раствором ацетата свинца, красители (фуксин, кристаллвиолетт), микроскоп, иммерсионное масло, пробирки с MПБ и МПА.

Ход работы

Закладкаэлективной культуры аэробных бактерий-аммонификаторон

1. Приготовить в колбе суспензию из 10 г почвы и 90 мл дистилли­рованной воды.

2. Расплавленный МПА охладить до 45-50°С и заразить одной петлей почвенной суспензии.

3. Содержимое перемешать и вылить в стерильную чашку Петри.

4. Инкубировать при t = 25-28°C в течение 3-4 суток.

Изучение культуры

1. Описать согласно схеме (работа 15) характерные колонии.

2. Приготовить постоянные препараты, микроскопировать с им­мерсионной системой.

На МПА развиваются преимущественно колонии p. Bacillus, p. Pseudomonas, p. Proteus, p. Achromobacter.

Закладка элективной культуры анаэробных бактерип-аммопификаторов

1. Стерильный МПБ, разлитый высоким слоем в пробирки, зара­зить комочком почвы.

2. Под пробку прикрепить полоску лакмусовой бумаги для обнару­жения аммиака и полоску бумаги, смоченной ацетатом свинца, для обна­ружения сероводорода.

3. Пробирки закрыть ватными пробками и сверху закрепить целло­фан с помощью резинового колечка (анаэробные условия).

4. Инкубировать при t = 25-28°С в течение 3-5 суток.

Изучение культуры

1. Отметить наличие аммиака и сероводорода (изменение цвета индикаторных бумажек).

2. Из нижних слоев жидкости выполнить мазок, приготовить постоянный препарат.

3. Микроскопировать с иммерсионной системой. Отметить наличие и расположение спор.

На мазках преимущественно выявляются бактерии р. Clostridium.

Закладка элективной культуры анаэробных бактерий-аммонификаторов

1. Стерильный МПБ, разлитый высоким слоем в пробирки, заразить комочком почвы.

2. Под пробку прикрепить полоску лакмусовой бумаги для обнаружения аммиака и полоску бумаги, смоченной ацетатом свинца, для обнаружения сероводорода.

3. Пробирки закрыть ватными пробками и сверху закрепить целлофан с помощью резинового колечка (анаэробные условия).

4. Инкубировать при t = 25-28ºС в течение 3-5 суток.

Дата добавления: 2014-12-17