Учебный план занятия для самостоятельной работы

Окрашивание железным гематоксилином с последующим докрашиванием по оригинальному методу Маллори.

МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ ДЫХАТЕЛЬНОГО АППАРАТА

Для фиксации дыхательного аппарата применяются жидкость Буэна, Ценкера и другие фиксаторы. Фиксировать легкие лучше всего путем перфузии фиксатора через сосуды. Для предотвращения спадения альвеол трахею нужно предварительно перевязать. Худшие результаты дает наполнение легкого фиксирующей жидкостью через канюлю, введенную в трахею. Это лучше делать до вскрытия грудной клетки (чтобы не спались альвеолы). Для того чтобы вытеснить воздух, фиксирующую жидкость нужно несколько раз вводить и вновь отсасывать. Если фиксируют кусочки легкого, помещая их в фиксатор, их следует покрыть сверху ватой, так как иначе они всплывут, и верхняя часть кусочка останется незафикси-рованной.

Для получения обзорных препаратов срезы лучше ориентировать перпендикулярно к поверхности органа.

Для окрашивания препаратов подходит гематоксилин-эозин, азан. Эластические элементы выявляют с помощью орсеина или резорцин-фуксина.

Железы и бокаловидные клетки воздухоносных путей хорошо окрашиваются муцикармином.

Приготовление растворов. 1. Анилиновый синий — оранжевый G-кислый — фуксин по Маллори. К 100 мл дистиллированной воды добавляют 0,5 г анилинового синего, 2 г оранжевого G и 2 г щавелевой кислоты. Раствор кипятят, остужают и фильтруют. Раствор хранится длительное время.

2. 0,1% водный раствор кислого фуксина.

3. 1% раствор фосфорно-вольфрамовой кислоты.

Методика окрашивания: 1) материал окрашивают железным гематоксилином; 2) помещают в 1% раствор кислого фуксина на 3 мин; 3) быстро промывают в дистиллированной воде и фиксируют окраску в 1% фосфорно-вольфрамовой кислоте 3—5 мин; 4) ополаскивают в воде и окрашивают в течение 2 мин в растворе анилиновый синий — оранжевый G — кислый фуксин; 5) ополаскивают и дифференцируют в 96% спирте, пока синими станут только коллагеновые волокна; 6) проводят через абсолютный спирт, ксилол, заключают в бальзам.

Результат: клетки эпителия альвеол окрашиваются в красноватый цвет и хорошо выделяются на синем фоне соединительнотканных перегородок, слизь становится голубого цвета, эритроциты — оранжевыми, мышечная ткань — желтой. Метод хорошо удается при использовании сулемовых фиксаторов. Если материал был зафиксирован другим методом, можно перед окрашиванием обработать срезы жидкостью Ценкера в течение 15—60 мин.

Оснащение занятия:

Изучить макропрепараты:

1. Токсоплазмоз мозга

Изучить микропрепараты:

Дата добавления: 2015-05-10