ЛПЗ № 2: Гистологическая техника

Определить разрешающую способность микроскопа

1. При использовании дневного света и объективов с увеличением 8х, 20х, 90х;

2. При использовании красного и объективов с увеличением 9х, 20х, 90х;

3. При использовании фиолетового света и объективов с увеличением 10х, 60х, 90х.

Рис. 1 Строение микроскопа

1 - 11-

2 - 12 -

3 - 13 -

4 - 14 -

5 - 15 -

6 - 16 -

7 - 17 -

8 - 18 -

9 - 19 -

10 -

Таблица 1 Устройство светового микроскопа

Название систем микроскопа	Составные системы	Функция системы	Примечания
Механическая
Оптическая
Осветительная

Литература

1. Кацнельсон З.С., Рихтер И.Д. – Практикум по цитологии, гистологии и эмбриологии. Л.: Колос. 1976

2. Сиразиев Р.З., Игумнов Г.А., Цыдыпов Р.Ц. и др. Руководство к практическим занятиям по цитологии, гистологии и эмбриологии. – Улан-Удэ: Изд-во Бурятской ГСХА, 2006. – 152 с.

Цель занятия:

· Изучить методы взятия материала и приготовления гистологических препаратов

· Усвоить приемы и методы гистологической техники

Приемы и методы приготовления гистологических препаратов называются гистологической техникой. Она состоит из нескольких последовательных приемов:

1. взятие материала;

2. его фиксация;

3. отмывания от фиксатора;

4. замораживания или заключения в уплотняющие среды;

5. приготовления срезов;

6. их окрашивания;

7. и их заключения.

1. Взятие материала. Оно производится острым режущим инструментом от убитого животного или от трупа (не более 1 часа после смерти), иногда биопсией при жизни животных. Величина взятого кусочка не должна превышать 1 см³.

2. Фиксация. Взятый кусочек помещается в фиксатор. При этом происходит быстрая коагуляция (осаждение, свертывание) белков. Однако, имеются фиксаторы, в которых происходит сильное обезвоживание коллоидов. При фиксации прекращаются процессы разложения, и тем самым, сохраняются в большей или меньшей степени прижизненные структуры материала. Наиболее часто в качестве фиксатора используется формалин, этиловый спирт, ацетон и другие вещества. Часто фиксаторы бывают сложного химического состава.

3. Промывка. Извлечение (удаление) фиксатора. Кроме некоторых фиксаторов производится промывание сначала обычной (водопроводной), а затем дистиллированной водой.

Для ускоренного приготовления гистологических препаратов из промывочной воды кусочки переносятся на столик специального микротома, замораживаются жидкой углекислой и готовятся среды.

4. Обезвоживание и заключение в плотные среды. Для заключения в целлоидин или парафин материал проводят через спирты возрастающей концентрации для обезвоживания.

После проводки через спирты производится заливка материала.

Заключение материала в целлоидин. Целлоидин представляет собой очищенный сор коллодионной нитраклетчатки. Из-за дефицитности целлоидина, его можно заменить кино- и рентгенопленками, имеющими нитроцеллоидную основу. С кино и рентгенопленок удаляют эмульсию, помещая в горячую воду или 20% раствора едкого натрия или калия. Затем их сушат и нарезают на мелкие кусочки и растворяют в равных частях спирт – эфира. Готовят 2, 4-5 и 10% растворы.

Для заливки в целлоидин материал из последнего спирта переносят в равные части спирта – эфира (6-24час.), затем делается последовательная проводка через растворы (2-, 4-5, 10%) целлоидина. В последнем густом растворе целлоидина оставляют на открытом воздухе на 2-3 дня. Спирт – эфир испаряется и целлоидин загустевает. Затем вырезаются заключенные кусочки материала и приклеиваются к деревянным блокам. Хорошо сохраняются блоки в 70º спирте.

Для заключения материала в парафин кусочки ткани проводятся через спирты возрастающей концентрации, включая абсолютный. В дальнейшем материал помещается в раствор из равных частей спирт хлороформа (вместо хлороформа можно использовать ксилол и толуол). Из этого раствора кусочек перекладывается в чистый хлороформ (2 порции) с последующим переносом в хлороформ – парафин (насыщенный раствор парафина в хлороформе) при температуре 35-40ºС. В последующем материал помещается в 3 порциях расплавленного парафина при температуре 54-56ºС. Из бумаги изготовляются формочки, куда переносятся материал и сверху заливается расплавленным парафином. Для быстрого застывания парафина формочки опускаются в чашки с холодной водой.

5. Приготовление срезов из целлоидиновых и парафиновых блоков. Готовятся срезы с помощью особых приборов – микротомов.

Наиболее распространенными являются санные микротомы. Они состоят из станины (корпуса), микрометрического винта. Объектодержателя, ножевых салазок с зажимом ножа. Для резки блоков используются микротомные ножи. По форме клина лезвия ножей различаются на прямые (обе стороны лезвия ножа плоские), плосковогнутые (одна сторона лезвия плоская, другая вогнутая) и двояковогнутые. Прямые ножи используются для срезки замороженных материалов и парафиновых блоков. Другие ножи чаще всего применяются для срезки целлоидиновых блоков.

При установке ножа нужно соблюдать угол резания, образуемый при пересечении верхней плоскости объекта с нижней стороной лезвия ножа. Считается наиболее лучшим угол резания около 15 градусов.

При гистохимических исследованиях иногда производится приготовление срезов из нефиксированной ткани для этой цели наиболее приемлемым является криостат. Он представляет холодильную установку с помещенным в ней микротомом. После включения прибора через 1-1,5 часа устанавливается автоматически поддерживаемая температура до 30ºС. При низкой температуре под контролем через иллюминатор готовятся замороженные срезы.

6. Окрашивание срезов. Перед окрашиванием срезы подвергаются предварительной обработке в зависимости от фиксации и заключения материала.

Парафиновые срезы не имеют достаточной прозрачности и затрудняется процесс окрашивания. Поэтому их подвергают депарафинированию с помощью ксилола или других растворителей парафина. Затем срезы выдерживают в спиртах нисходящей концентрации о последующим помещением в воду.

Целлоидиновые срезы, полученные из блоков, хрнящихся в 70º спирте, помещают сначала в 50º спирт, а затем в воду.

Срезы из криостата сразу помещают на предметные стекла. Замороженные срезы, приготовленные на микротоме или замораживающем столике, сразу опускают в воду.

Окрашиванию подвергаются наклеенные на предметные стекла и ненаклеенные срезы. В первом случае для крашения используются биологические стаканчики, высокие бюксы и кюветы. Ненаклеенные срезы помещаются в низкие бюксы, часовые стекла. При этом перенос срезов производится с помощью стеклянных крючков.

При переносе срезов из одного раствора в другой нужно избегать загрязнения последующих реактивов. При переносе предметных стекол с наклеенными срезами надо давать возможность стекать жидкости, но не допуская их подсыхания. При окрашивании срезов необходимо чаще менять растворы, не допуская их загрязнения.

В гистологии применяется много различных красок. Они по химическому составу делятся на основные, кислые, нейтральные и индиферентные. Основные краски являются красящими основаниями и их солями. Гистологические структуры, окрашивающиеся основными красками называются базофильными. Кислые краски – это красящие кислоты и их соли. Гистологические структуры, окрашивающиеся кислыми красками называются оксофильными или ацидофильными.

Нейтральные краски – это солеобразные соединения, у которых анионы и катионы являются красящими радикалами. В нейтральных красках базофильные структуры окрашиваются основными компонентами красителя, а кислые – соответственно кислыми радикалами краски.

Индиферентные краски – это не красители, а окрашенные вещества. В гистологии они используются для окрашивания жировой ткани. Индиферентные краски (суданы разных марок) хорошо растворяются в жировой ткани и тем самым окрашивают ее.

Также красители делятся на субстактивные и аджективые. Первые окрашивают срезы без какой-либо дополнительной обработки, а вторые для окрашивания нуждаются в дополнительной обработке – протравливании. Протравами служат окислы двух – и трехвалентных металлов (железа, алюминия, хрома и других). При окрашивании протравы с красителями образуют хелатный комплекс (лак), который заметно отличается от взятого красителя. Протрава в отдельных случаях может превратить вещество в краситель. Так, например, гематоксилин в чистом виде почти не обладает красящими свойствами, так как его лаки становятся сильными красителями.

В гистологии применяются прогрессивные и регрессивные метод окрашивания. При прогрессивном методе срезы окрашивают до желательной интенсивности, когда все необходимые детали среза четко выявляются. При работе регрессивным методом срезы специально перекрашиваются, а затем избыток красителя извлекается соответствующими реактивами.

Самым распространенным классическим гистологическим методом является окрашивание гематоксилин – эозином.

Гематоксилин – экстракт камышового дерева. Имеется много рецептов приготовления гематоксилина. В нашей лаборатории часто применяются гематоксилины Каррачи, Гейденгайна и Вейгерта. Гематоксилин Каррачи имеет следующий химический состав:

1. Вода дистиллированная – 400,0 мл

2. Квасцы алюмо – калиевые – 25,0 г.

3. Гематоксилин – кристаллический – 0,5 г.

4. Глицерин – 100,0 мл.

5. Йодноватокислый калий (КО₃) – 0,03 г.

Для приготовления железного гематоксилина Гейденгайна сначала готовят два раствора.

1. 10% раствор железоаммиачных квасцов (кристаллы их должны быть только светло – фиолетового цвета).

2. Растворяют 1,0 г гематоксилина в 10мл 96º спирта и затем добавляют 90мл дистиллированной воды.

Отмечают уровень второго раствора и его оставляют для созревания на 4-5 недель. При этом раствор должен быть свободный доступ воздуха. Для чего среду с раствором прикрывают марлей сложенный в несколько слоев. По мере испарения воды из раствора доливают воду до исходного уровня. По мере созревания раствор красителя становится от светло-коричневого до темно-коричневого. Перед окраской раствор краски разбавляют равным количеством дистиллированной воды.

Железный гематоксилин Вейгерта.

Готовят два раствора:

1. 1,0г гематоксилина растворяют в 100мл 96º спирта. Раствор созревает на свету около месяца.

2. Официальный раствор полуторахлористого железа 4,0мл, соляная кислота (удельный вес 1,15-1,17) 1,0мл, вода дистиллированная 95,0мл. Официальный раствор полуторахлористого железа представляет собой 50% водный раствор хлористого железа (FeCI₃ ˟ 6H₂O – желто-бурая масса).

Перед работой обо раствора смешивают в равных частях.

Окрашивание срезов гематоксилин – эозином. Замороженные срезы, за исключением случаев окраски на липиды, помещают для обезжиривания в 70º и 96º спиртах. Парафиновые срезы для удаления его проводят через 2 порции ксилола по 1-2 минуты, затем через спирты убывающей концентрации и переносят в воду.

Схема окрашивания гематоксилин – эозином

прогрессивным методом.

1. Срезы помещают в раствор гематоксилина (Карраччи и другие) на 3-5 минут.

2. Срезы переносят в обычную воду до приготовления синеватого цвета. При этом ядра клеток, окрашенные в красновато-фиолетовый цвет в щелочной среде воды, приобретают сине-фиолетовый цвет. Синие ядра клеток становятся более контрастными. Затем срезы переносят в дистиллированную воду на 3-5 минут.

3. Срезы помещают в 1% раствор эозина на 1-3 минуты.

4. Отмывают краситель 1-2 и более минут дистиллированной водой.

Регрессивный метод окрашивания. В этом методе используются легко перекрашивающие растворы гематоксилина Бемера, Делафильда, Эрлиха (рецепты их приготовления имеются в пособиях по гистологической технике).

Схема окрашивания

1. Окраска срезов в растворе гематоксилина 2-5 минут.

2. Промывка в дистиллированной воде 1-6 секунд.

3. Срезы переносят в 0,5-1% раствор соляной кислоты на 70º спирте 3-30 секунд.

Срезы при дифференцировке начинают краснеть. При передержке в солянокислом спирте может произойти полное исчезновение краски. Затем красят эозином.

Метод окрашивания под ван Гизон дает много цветное окрашивание разных гистоструктур. Перед окраской растворы Вайгерта1 и 2 смешивают поровну. Получается густая темно-фиолетовая жидкость. Нужно иметь в виду, что в готовом виде краска быстро портится из-за наличия сильных окислителей.

Вторую краску –пикрофуксин готовят из насыщенного водного раствора пикриновой кислоты и 1% водного раствора кислого фуксина.

Берут 100,0 мл пикриновой кислоты и смешивают с 10 мл фуксина. Образуется стойкая смесь гранатового цвета, сохраняющаяся месяцами.

Схема окрашивания по ван Гизон.

1. Срезы окрашиваются в гематоксилине Вейгерта в течение 3-5 минут.

2. Срезы быстро ополаскивают в 2 порциях обычной воды.

3. окрашивают пикрофуксином 1-3 минуты.

4. Срезы быстро ополаскивают в обычной воды.

После окраски гематоксилин – эозином, по ван Гизон и другими методами готовятся гистологические препараты. Существуют разные методы приготовления препаратов. Чаще всего пользуются заключением в бальзам. Для чего срезы проводят через спирты возрастающей консистенции, а затем через просветляющие среды. К ним относятся ксилол, толуол, эфирные масла, креозот, скипидар, карбоксилол. В большинстве случаев пользуются ксилолами или толуолом. В них срезы помещаются на непродолжительное время. Заключают срезы после ксилола или толуола в канадский или пихтовый бальзам.

1. Меркулов Г.А. – Курс патологической техники. М.: Медицина, 1969

Раздел ЦИТОЛОГИЯ

Дата добавления: 2015-04-30