Возможности выращивания проходных рыб в солоноватой воде

Оптимальные температуры развития можно определить, оценивая интенсивность обменных процессов на отдельных этапах (при строгом морфологическом контроле) по изменению потребления кислорода как показателя скорости метаболических реакций при разных температурах. Минимальное потребление кислорода за определенную стадию развития будет соответствовать оптимальной температуре.

Факторы, влияющие на процесс инкубации, и возможности их регулирования.

Из всех абиотических факторов наиболее сильным по своему воздействию на рыб является температура. Температура оказывает очень большое влияние на эмбриогенез рыб на всех этапах и стадиях развития эмбриона. Причем для каждого этапа развития эмбриона имеется оптимальная температура. Под оптимальными следует понимать такие температуры, при которых наблюдается наибольшая скорость метаболизма (обмена веществ) на отдельных этапах без нарушения морфогенеза. Температурные условия, при которых проходит эмбриональное развитие в естественных условиях и при существующих методах инкубации икры практически никогда не соответствуют максимальному проявлению ценных видовых признаков рыб, полезных (нужных) человеку.

Методы определения оптимальных температурных условий развития у эмбрионов рыб довольно сложные

Установлено, что в процессе развития оптимальная температура для весенне-нерестующих рыб повышается, для осенне-нерестующих понижается.

Величина зоны оптимальных температур по мере развития эмбриона расширяется и достигает наибольших размеров перед вылуплением.

Определение оптимальных температурных условий развития позволяет не только усовершенствовать методику инкубации (выдерживания предличинок, подращивания личинок и выращивания молоди), но и открывает возможности разработки приемов и методов направленного воздействия на процессы развития, получения эмбрионов с заданными морфофункциональными свойствами и заданных размеров.

Рассмотрим воздействие на инкубацию икры других абиотических факторов.

Развитие эмбрионов рыб происходит при постоянном потреблении из внешней среды кислорода и выделения диоксида углерода. Постоянным продуктом экскреции эмбрионов является аммиак, возникающий в организме в процессе распада белков.

Кислород. Диапазоны концентраций кислорода, в пределах которых возможно развитие эмбрионов разных видов рыб, существенно различаются, причем концентрации кислорода, соответствующие верхним границам этих диапазонов, намного превышают те, которые встречаются в природе. Так, для судака минимальная и максимальная концентрация кислорода, при которых еще происходит развитие эмбрионов и выклев предличинок, составляют соответственно 2,0 и 42,2 мг/л.

Установлено, что с увеличением содержания кислорода в диапазоне от нижней летальной границы до величин значительно превышающих его естественное содержание, скорость развития эмбрионов закономерно возрастает.

В условиях недостатка или избытка концентраций кислорода у эмбрионов наблюдаются большие различия в характере морфофункциональных изменений. Так, при пониженных концентрациях кислорода наиболее типичные аномалии выражаются в деформации тела и непропорциональном развитии и даже отсутствии отдельных органов, появление кровоизлияний в области крупных сосудов, образование водянок на теле и желчном мешке. При повышенных концентрациях кислорода наиболее характерным морфологическим нарушением у эмбрионов является резкое ослабление или даже полное подавление эритроцитарного кроветворения. Так, у эмбрионов щуки развивавшихся при концентрации кислорода 42-45 мг/л, к концу эмбриогенеза эритроциты в кровяном русле исчезают полностью.

Наряду с отсутствием эритроцитов наблюдаются и другие существенные дефекты: прекращается мышечная моторика, утрачивается способность реагировать на внешние раздражения и освободиться от оболочек.

В целом эмбрионы, инкубируемые при различных концентрациях кислорода существенно различаются по степени их развития при вылуплении

Диоксид углерода (СО). Развитие эмбрионов возможно в очень широком диапазоне концентраций СО, причем величины концентраций, соответствующие верхним границам этих диапазонов, намного превышают те, с которыми эмбрионы сталкиваются в природных условиях. Но при избытке диоксида углерода в воде количество нормально развивающихся эмбрионов снижается. В опытах было доказано, что увеличение концентрации диоксида в воде с 6,5 до 203,0 мг/л вызывает снижение выживаемости эмбрионов кеты с 86% до 2%, а при концентрации диоксида углерода до 243 мг/л – все эмбрионы в процессе инкубации погибали.

Установлено также, что эмбрионы леща и других видов карповых (плотва, синец, густера) нормально развиваются при концентрации диоксида углерода в пределах 5,2-5,7 мг/л, но при увеличении его концентрации до 12,1-15,4 мг/л и уменьшении концентрации до 2,3-2,8 мг/л наблюдалась повышенная гибель этих рыб.

Таким образом, как снижение, так и увеличение концентрации диоксида углерода оказывает на развитие эмбрионов рыб отрицательное влияние, что дает основание считать диоксид углерода необходимым компонентом развития. Роль диоксида углерода в эмбриогенезе рыб многообразна. Увеличение его концентраций (в пределах нормы) в воде усиливает мышечную моторику и его наличие в среде необходимо для поддержания уровня двигательной активности эмбрионов, с его помощью происходит распад оксигемоглобина эмбриона и этим самым обеспечивается необходимое напряжение в тканях, он необходим для образования органических соединений тела.

Аммиак у костистых рыб является основным продуктом азотистой экскреции как в период эмбриогенеза, так и во взрослом состоянии. В воде аммиак существует в двух формах: в форме недиссоциированных (не разъединенных) молекул NH и в форме ионов аммония NH. Соотношение между количеством этих форм существенно зависит от температуры и РН. С увеличением температуры и РН количество резко NH возрастает. Токсическое действие на рыб оказывает преимущественно NH. Действие NH оказывает на эмбрионов рыб отрицательное влияние. Например, у эмбрионов форели и лосося аммиак вызывает нарушение их развития: вокруг желточного мешка появляется полость, заполненная голубоватой жидкостью, в головном отделе образуются кровоизлияния, снижается двигательная активность.

Ионы аммония в концентрации 3,0 мг/л вызывают замедление линейного роста и увеличение массы тела эмбрионов горбуши. Вместе с тем, нужно иметь ввиду, что аммиак у костистых рыб может вторично включиться в реакции обмена и образованием нетоксичных продуктов.

Водородный показатель РН воды, в которой развиваются эмбрионы, должен быть близким к нейтральному уровню – 6,5-7,5.

Требования к воде. Перед подачей воды в инкубационные аппараты её необходимо очищать и обезвреживать, используя отстойники, фильтры грубой и тонкой очистки, бактерицидные установки. На развитие эмбрионов могут отрицательно влиять используемая в инкубационных аппаратах латунная сетка, а также свежая древесина. Это влияние особенно проявляется, если не обеспечена достаточная проточность. Воздействие латунной сетки (точнее ионов меди и цинка) вызывает угнетение роста и развития, снижает жизнестойкость эмбрионов. Воздействие веществ экстрагируемых из древесины, приводит к возникновению водянки и аномалиям в развитии разных органов.

Проточность воды. Для нормального развития эмбрионов необходима проточность воды. Отсутствие проточности или её недостаточность оказывают на эмбрионов такое же действие, как недостаток кислорода и избыток диоксида углерода. Если у поверхности эмбрионов не происходит смены воды, то диффузия кислорода и диоксида углерода через оболочку не обеспечивает необходимой интенсивности газообмена и эмбрионы испытывают недостаток кислорода. Несмотря на нормальное насыщение им воды в инкубационном аппарате. Эффективность водообмена в большей степени зависит от циркуляции воды вокруг каждой икринки, чем от общего количества поступающей воды и скорости её в инкубационном аппарате. Эффективный водообмен во время инкубации икры в неподвижном состоянии (икра лососевых), создается при циркуляции воды перпендикулярно плоскости рамок с икрой – снизу вверх с интенсивностью в пределах 0,6-1,6 см/сек. Этому условию в полной мере отвечает инкубационный аппарат ИМ, имитирующий условия водообмена в естественных нерестовых гнездах.

Для инкубации эмбрионов белуги и севрюги оптимальным считается расход воды в пределах 100-500 и 50-250 мл на одного эмбриона в сутки соответственно. Перед вылуплением предличинок в инкубационных аппаратах увеличивают расход воды с целью обеспечения нормальных условий газообмена и удаления продуктов матаболизма.

Известно, что небольшая соленость (3-7) губительна для патогенных бактерий, грибков и оказывает благоприятное воздействие на развитие и рост рыб. В воде соленостью 6-7 не только снижается отход развивающихся нормальных эмбрионов и ускоряется рост молоди, но и развивается перезревшая икра, которая погибает в пресной воде. Отмечена также повышенная стойкость эмбрионов, развивающихся в солоноватой воде, к механическим воздействиям. Поэтому в последнее время большое значение приобретает вопрос о возможности выращивания проходных рыб в солоноватой воде с самого начала их развития.

Влияние света. При проведении инкубации необходимо учитывать приспособленность эмбрионов и предличинок различных видов рыб к освещению. Например, для эмбрионов лососевых свет губителен, поэтому инкубационные аппараты должны быть затемнены. Инкубация икры осетровых в полной темноте, наоборот, приводит к задержке развития. Воздействие прямого солнечного света вызывает угнетение роста и развития эмбрионов осетровых и снижение жизнеспособности предличинок. Это связано с тем, что икра осетровых в естественных условиях развивается в мутной воде и на значительной глубине, то есть при слабом освещении. Поэтому при искусственном воспроизводстве осетровых инкубационные аппараты следует защищать от прямого солнечного света, так как он может вызывать повреждение эмбрионов и появление уродов.

Уход за икрой во время инкубации.

Перед началом рыбоводного цикла все инкубационные аппараты необходимо отремонтировать и продезинфицировать раствором хлорной извести, промыть водой, стены и пол вымыть 10% известковым раствором (молоком). В профилактических целях против поражения икры сапролегнией её перед загрузкой в инкубационные аппараты необходимо обработать 0,5%-ным раствором формалина в течение 30-60 секунд.

Уход за икрой в период инкубации заключается в наблюдении за температурой, концентрацией кислорода, диоксида углерода, РН, проточностью, уровнем воды, световым режимом, состоянием эмбрионов; отборе мертвых эмбрионов (специальным пинцетом, грохотками, грушами, сифоном); профилактической обработке по мере необходимости. Мертвые икринки отличаются беловатым цветом. При заилении икры лососевых проводят душевание. Душевание и отбор мертвых эмбрионов нужно проводить в периоды пониженной чувствительности.

Продолжительность и особенности инкубации икры различных видов рыб. Вылупление предличинок в различных инкубационных аппаратах.

Продолжительность инкубации икры в значительной степени зависит от температуры воды. Обычно с постепенным повышением температуры воды в пределах оптимальных границ для эмбриогенеза того или иного вида развитие эмбриона плавно ускоряется, но при приближении к температурному максимуму, скорость развития возрастает все меньше. При температурах, близких к верхнему порогу, на ранних стадиях дробления оплодотворенной икры её эмбриогенез, несмотря на повышение температуры, замедляется, а при большем повышении наступает гибель икры.

При неблагоприятных условиях (недостаточная проточность, перегрузка инкубационных аппаратов и т. д.) развитие инкубируемой икры замедляется, вылупление начинается с опозданием и происходит дольше. Разница в продолжительности развития при одинаковой температуре воды и различной проточности и загрузке может достигать 1/3 периода инкубации.

Особенности инкубации икры различных видов рыб. (осетровых и лососевых).

Осетровые.: снабжение инкубационных аппаратовводой с насыщением кислородом 100%, концентрацией диоксида углерода не более 10 мг/л, РН – 6,5-7,5; защита от прямого солнечного света во избежание повреждения эмбрионов и появление уродов.

Для севрюги оптимальная температура от 14 до 25 С, при температуре 29 С наступает торможение развития эмбрионов, при 12 С – большая гибель и появляется много уродов.

Для белуги весеннего хода оптимальная температура инкубации 10-15 С (инкубация при температуре 6-8 С приводит к 100 % гибели, а при 17-19 С появляется много аномальных предличинок.)

Лососевидные. Оптимальный уровень кислорода при оптимальной температуре для лососевидных – 100% от насыщения, уровень диоксида не более 10 мг/л (для горбуши допустимо не более 15, кеты не более 20 мг/л), РН – 6,5-7,5; полное затемнение во время инкубации икры лососевых, защита от прямого солнечного света икры сиговых.

Для балтийского лосося, семги, ладожского лосося оптимальная температура 3-4 С. После вылупления оптимальная температура повышается до 5-6, а затем до 7-8 С.

Инкубация икры сиговых в основном происходит при температуре 0,1-3 С в течение 145-205 суток в зависимости от вида и термического режима.

Вылупление. Продолжительность вылупления величина непостоянная и зависит не только от температуры, газообмена, других условий инкубации, но и от специфических условий (скорости течения в инкубационном аппарате, толчков и др.), необходимых для осуществления выделения фермента вылупления эмбрионов из оболочек. Чем хуже условия, тем дольше продолжительность вылупления.

Обычно при нормальных экологических условиях вылупление жизнеспособных предличинок из одной партии икры завершается у осетровых в течение от нескольких часов до 1,5 суток, у лососевых – 3-5 суток. Момент, когда в инкубационном аппарате имеется уже несколько десятков предличинок, можно считать началом периода вылупления. Обычно после этого наступает массовое вылупление, а в конце вылупления в аппарате остается в оболочках мертвые и уродливые эмбрионы.

Растянутые сроки вылупления чаще всего свидетельствуют о неблагоприятных условиях среды и приводят к увеличению разнокачественности предличинок и повышению их смертности. Растянутость вылупления представляет большое неудобство для рыбовода, поэтому важно знать следующее.

Выклев зародыша из икры во многом зависит от выделения фермента вылупления в железе вылупления. Этот фермент появляется в железе после начала пульсации сердца, затем его количество быстро возрастает вплоть до последней стадии эмбриогенеза. На этой стадии фермент выделяется из железы в перивителиновую жидкость, ферментативная активность которой резко возрастает, а активность железы снижается. Прочность оболочек с появлением фермента в перивителиновой жидкости быстро падает. Двигаясь в ослабленных оболочках, эмбрион разрывает их, выходит в воду и становится предличинкой. Выделение фермента вылупления и мышечная активность, имеющая первостепенное значение для освобождения из оболочек, в большей степени зависит от внешних условий. Они стимулируются улучшением условий аэрации, движением воды, толчками. Для обеспечения дружного вылупления, например, у осетровых, необходимы: сильная проточность и энергичное перемешивание икринок в инкубационном аппарате.

Сроки вылупления предличинок зависят также от конструкции инкубационных аппаратов. Так, у осетровых наиболее благоприятные условия для дружного вылупления создаются в инкубаторе «осетр», в аппаратах Ющенко вылупление личинок значительно растягивается и еще менее благоприятные условия для вылупления – в лоточных инкубационных аппаратах Садова и Каханской.

ТЕМА. БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ ВЫДЕРЖИВАНИЯ ПРЕДЛИЧИНОК, ПОДРАЩИВАНИЯ ЛИЧИНОК И ВЫРАЩИВАНИЯ МОЛОДИ РЫБ.

Выбор рыбоводного оборудования в зависимости от эколого-физиологических свойств вида.

В современном технологическом процессе заводского воспроизводства рыб вслед за инкубацией икры начинается выдерживание предличинок, подращивание личинок и выращивание молоди. Такая технологическая схема предусматривает полный рыбоводный контроль в период становления организма рыбы, когда происходят важные биологические преобразования развивающегося организма. Для осетровых и лососевых, например, к таким преобразованиям относится – становление системы органов, рост и развитие, физиологическая подготовка к жизни в море.

Во всех случаях нарушения экологических условий и технологии разведения, связанные с отсутствием правильных представлений о тех или иных особенностях биологии разводимого объекта или механическом использовании рыбоводных приемов оборудования и режима, без понимания биологического смысла, влекут за собой повышенную гибель выращиваемых рыб в период раннего онтогенеза.

Одним из наиболее ответственных периодов всего биотехнического процесса искусственного воспроизводства рыб является выдерживание предличинок и подращивание личинок.

Освободившиеся из оболочек предличинок проходят в своем развитии этап пассивного состояния, который характеризуется малой подвижностью. При выдерживании предличинок учитывают приспособительные черты этого периода развития данного вида, создают условия, обеспечивающие наибольшую выживаемость до перехода на активное питание. С переходом на активное (экзогенное) питание начинается следующее звено рыбоводного процесса – подращивание личинок.

Дата добавления: 2015-08-31