Резистентность

КОКЛЮШ

Тема 9. Возбудители воздушно -капельных инфекций

План лекций:

1. Коринебактерии дифтерии. Бордетеллы коклюша и паракоклюша. Морфологические и культуральные свойства. Факторы патогенности. Источ-ники, механизмы и пути заражения. Патогенез. Клиника. Лабораторная диагностика. Специфическая профилактика и лечение вышеперечисленных возбудителей болезней.

2. Микобактерии туберкулеза: морфологические особенности, фер-ментативные свойства и антигенная структура. Пути инфицирования тубер-кулезом, патогенез и клинические проявления заболевания. Бактериос-копическое и бактериологическое исследование. Экспресс - диагностика. Препараты для лечения и специфической профилактики.

Студент должен знать:

· основных представителей возбудителей воздушно-капельных инфекций дифтерии, бордетеллы коклюша, паракоклюша и мико-бактерии туберкулеза.

· морфологические,культуральные свойства. Факторы патогенности

· Лабораторную диагностику вышеназванных возбудителей болезней. Экспресс - диагностика.

· Препараты для лечения и специфической профилактики.

Коклюш — инфекционное заболевание преимущественно детско­го возраста, при котором поражаются бронхиальное дерево и интерстициальная легочная ткань. Возбудитель (Bordetella pertussis) коклюша был выделен в 1906 г. Ж. Борде и О. Жангу. Он относит­ся к роду Bordetella, семейству Brucellaceae.

Морфология. Бактерии коклюша—тонкие палочки размером 0,5—1 мкмвстре-чаются также овоидные формы. Грамот­рицательны. При окраске по Романовскому — Гимзе и толуидиновым синим обнару­живается капсула. При элек­тронной микроскопии также обнаружена трехслойная оболочка, зернистая цито­плазма, состоящая из гранул-рибосом. Отдельные клетки имеют включения, по­добные волютину. Возбудитель коклюша: 1 — в чис­той культуре; 2 — колонии на среде КУА; 3 — колонии В. pertussis.

Культивирование.

• Бакте­рии коклюша — аэробы, оп­тимальная температура 35— 37°, рН 6,8—7,4
• Растут на картофельно-глицериновом агаре с добавлением: 30% крови (среда Борде — Жангу), молочно-кровяном или казеиново-угольном агаре Колонии появляются через 3—4 дня, мелкие, блестящие, напоминающие ка­пельки ртути, с зоной гемолиза.
• Колонии паракоклюшных бактерий сходны с коклюшными, «но они более крупные, растут быстрее, чем коклюшные, и колонии их проявляются на 2- й день, дают коричне­вое окрашивание среды Борде — Жангу и гемолиз.

Ферментативные свойства. Возбудитель коклюша биохимически мало активен. Большинство штаммов каталазо-положительны. Мо­чевину не расщепляют, но паракоклюшные — расщепляют (обра­зуют фермент уреазу).

Токсины и ферменты патогенности. Возбудитель коклюша обра­зует эндотоксин (экзотоксин у него не обнаружен). Бактерии синтезируют гиалуронидазу, ле-цитиназу н плазмокоагулазу.

Антигенная структура. Свежевыделенные штаммы на питатель­ных средах быстро образуют отдельные фазы (груп­пы), отличающиеся по антигенному строению.

1)- Первая фаза облада­ет тремя антигенами: характерными для S- (виру-лентной) формы: капсульным термолабильным L- антигеном, относительно термоста­бильным S- и термостабильным О-антигеном.

2)- Во второй фазе отсут­ствует L-антиген, третья содержит только сома-тический О-антиген.

Ø Коклюшные бактерии погибают при 50—56° в течение 10—30 минут.

Ø Чувствительны к 3—5%- ной карболовой кис­лоте и лизолу.

Ø Устойчивы к пенициллину и сульфаниламидам.

Патогенность для животных. Возбудитель коклюша патогенен только для чело-века.

Патогенез. Заражение человека происходит воздушно-капельным путем. Клиника. Инкубационный период длится от 3 до 8 дней. В основе патогенеза при коклюше лежит токсическое действие возбудителя на нервную, дыхательную и сосудистую системы, приводящее к спазму бронхов и дыхательной мускулатуры. В результате возни­кает спазматический кашель с резко затрудненным вдохом и час­тыми кашлевыми толчками. Кашель заканчивается выделением большого количества вязкой мокроты, а иногда и рвотой. В тяже­лых случаях приступы кашля доходят до 30 и более раз в сутки. Тяжелые формы болезни осложняются бронхопневмонией, ателек­тазами (закупоркой) и бронхоэктазами (расширением) бронхов.

Иммунитет. После перенесенной болезни остается стойкий, как правило, пожизненный антимикробный иммунитет.

Лабораторная диагностика. Материал для иссле­дования: мокрота, слизь из зева и носоглотки. Мокроту сеют спо­собом «кашлевых пластинок» (чашка со средой подставляется во время приступа кашля на 8—10 см от больного) или берут носо­глоточным тампоном, введение которого способствует кашлю, на тампон попадает, кроме слизи из носоглотки, и мокрота.

Для микробиологической диагностики коклюша применяют бактериологи-ческий, серологический и аллергический методы.

Схема выделения и идентификации возбудителей коклю­ша и паракоклюша (Bordetella pertussis и Bordetella parapertussis).

Бактериологический метод. Посев производят на сре­ду Борде—Жангу или казеиново-угольный агар. Для подавления роста посторонней флоры добавляют пенициллин в концентрации 0,25—0,5 ЕД на 1 м л среды. После 3—4- суточного инкубирования в термостате чашки просматривают через лупу. При появлении ха­рактерных колоний готовится мазок и окрашивается по Граму. Об­наружив мелкие грамотрицательные палочки, делают посев колонии на скошенные среды в пробирках (казеиново-угольную, среду Бор­де—Жангу, молочно-кровяной агар) для выделения чистой культуры.

Серологический метод. Реакция агглютинации ставится с сывороткой больного, которую разводят 1:10, 1:20 до 1: 320. Каждое разведение берется по 0,5—1 мл и добавляется по 2—3 капли 2 млрд. антигена. Пробирки.помещают в термостат при 37° на 18 часов. Реакция считается положительной с разведения сыво­ротки 1: 40 и выше.

Реакция связывания комплемента (РСК) ставится обычным способом с инак-тивированной сывороткой больного и 5 млрд. взвесью отмытых живых коклюш-ных бактерий.

Аллергический метод. Внутрикожно вводится 0,1 мл коклюшного антигена. Положительная проба — появляется мест­ный воспалительный инфильтрат.

Лечение. Применяется гамма-глобулин, левомицетин, стрепто­мицин и антибиотики тетрациклинового ряда.

Специфическая профилактика. Применяются коклюшно-дифтерийная вакцина и адсорбированная коклюшно-дифтерийно-столбнячная (АКДС). Обе вакцины содержат убитые формалином бактерии и очищенные, концентрированные анаток­сины, сорбированные на геле гидрата окиси алюминия.

Дата добавления: 2013-12-13