Возбудитель туберкулеза (mycobacterium tuberculosis)

Лабораторная диагностика.

Материал для иссле­дования: слизь из зева и носа, пленка с миндалин или из носоглот­ки. Материал берут натощак или через 2 часа после еды. Для микробиологической диагностики дифтерии применяют микроско­пический, бактериологический и другие методы.

Микроскопический метод. Слизь или пленку берут двумя тампонами. Один из них используют для посева, а другой для приготовления трех мазков, окрашиваемых по Граму, простым способом (синькой Леффлера) и по Нейссеру для выявления волютиновых зерен, окрашивающихся в темный цвет. При этом тело бактерии окрашивается в желтый или светло-коричневый цвет.

Бактериологический метод. Исследуемый материал сеют в пробирки со свернутой сывороткой, в чашку Петри с теллу-ритовым кровяным агаром. При этом материал втирают тампоном в поверхность согретой в термостате элективной среды, на которой дифтерийные бактерии быстрее растут, чем другие. Колонии появ­ляются через 10—24—48 часов. При обнаружении типичных дифте­рийных колоний производят пересевы на свернутую сыворотку— для выделения чистой культуры, на сывороточные среды с углево­дами (глюкоза, мальтоза, крахмал)—для определения фермента­ тивной активности, на чашки со специальной средой — для выявле­ния токсигенности (реакция преципитации в геле).

Схема определения токсигенности дифтерийных бакте­рий. Токсигенные штаммы (208, 510, 12) и нетоксигенный штамм (75) засеяны на агаровую пластинку, на которую предваритель­но помещена полоска фильтровальной бумаги (Б), пропитанной антитоксической сывороткой (500 АЕ/мл). Токсин и антитоксин диффундируют в агар навстречу друг другу, и на месте их кон­такта образуются белые полоски преципитата. Нетоксигенный штамм (75) их не образует.

Определение серотипов дифтерийных бактерий прово­дится путем постановки реакции агглютинации на стекле с моно­типовыми сыворотками I, II, III, IV и VI. Агглютинирующие диф­терийные сыворотки для постановки реакции предварительно раз­водят 1: 25.

Токсигенность дифтерийных бактерий определяется мето­дом преципитации в геле. В чашку Петри наливают расплавленный и охлажденный до 50° фосфатно-пептонный агар. На середину за­стывшей агаровой пластинки помещают полоску стерильной фильт­ровальной бумаги (2,5X8 см), пропитанной антитоксической сыво­роткой, содержащей в 1 мл 500 АЕ. После подсушивания в термо­стате в течение 10—15 минут сеют исследуемую культуру штриха­ми, перпендикулярными фильтровальной бумаге, или бляшками диаметром 1 см на расстоянии 1 см от края полоски. В одной чашке сеют 3—4 штамма с каждой стороны полоски, один из них конт­рольный— заведомо токсигенный. Чашку ставят в термостат и и учитывают реакцию через 24—48—72 часа. Результат: атоксиген-ный штамм не дает линии преципитации; контрольный (заведомо токсигенный) штамм и токсигенные штаммы, выделяемые от боль­ных, образуют линии преципитации, т. е. они обладают токсиген-ными свойствами.

Лечение. Больным вводят внутримышечно антитоксическую сы­воротку (диаферм), концентрированную и очищенную (диализом и ферментированием) от балластных веществ. Одновременно при­меняют бензилпенициллин (натриевая и калиевая соли) по 400 000 ЕД, эритромицин по 0,25 г и ристомицин по 500 000 ЕД, сердечные и сульфамидные препараты.

Специфическая профилактика. Проводят обязательную имму­низацию детей адсорбированным дифтерийным анатоксином или сочетанием дифтерийного анатоксина с коклюшной вакциной и столбнячным анатоксином (вакцина АКДС). Для получения диф­терийного анатоксина используют токсигенный штамм дифтерий­ной палочки «Парк—Вильямс-8». Анатоксин — обезвреженный формалином и теплом фильтрат культуры. Препарат очищен от балластных белков, сконцентрирован и сорбирован на геле гидра­та окиси алюминия. В 1 мл препарата содержится 60 ИЕ дифте­рийного анатоксина.

Туберкулез — инфекционное заболевание человека и животных. Трудность борьбы с туберкулезом состоит в том, что источники инфекции на­ходятся не только среди людей, но и среди животных. Возбудитель туберкулеза был открыт Р. Кохом в 1882 г.

Классификация. Патогенные микобактерии туберкулеза подраз­деляются на три основных типа:

ü человеческий (tuberculosis humanus) — возбудитель туберкулеза человека;

ü бычий (tuberculosis в ovinus)—возбу­дитель туберкулеза рогатого скота;

ü птичий(tuberculosis avium)—возбу­дитель туберкулеза птиц.

По существующей классификации ати­пичные микобактерии подразделяются на три группы:

• Фотохромогенные, выделяющиеся от больных туберкулезом без пигмента, но в процессе культивирования и при наличии света образуется лимонно-желтый пигмент.
• Нефотохромогенные, образующие серовато-желтоватый пиг­мент независимо от наличия света.
• Скотохромогенные, образующие при культивировании в тем­ном месте ярко-оранжевый пигмент, устоичивые к антибактериальным препаратам.

В ввиду формирования лекарственноустойчивых форм микобактерии туберкулеза, сохранение трудоспо­собности и удовлетворительное самочув-ствие больного ухудшается.

Морфология. Возбудитель туберкулеза — тонкая прямая или изогнутая палочка длиной 1,5—4 мкм толщиной 0,3—0,5 мкм

возбудитель туберкулеза (окраска по Цилю — Нильсену);

Микобактерии не образуют спор и капсул, не имеют жгутиков, грамположительны, окрашиваются по Цилю-Нильсену в красный цвет. Они располагаются поодиночке или но 2—3 палочки.

При исследовании в электронном микроскопе у микобактерии обнаруживается зернистость их цитоплазмы. Зерна бывают кисло­тоустойчивые и кислотоподатливые. Кислотоустойчивые нельзя смешивать с зернами В не­благоприятных условиях среды обитания они приобретают: ните­видные, зернистые, ветвящиеся, кокковидные, фильтрующиеся и L-формы. В 1910 г. А. Фонтес указывал, что патологический мате­риал, взятый от человека, больного туберкулезом, и профильтрован­ный через бактериальный фильтр, оказался заразным для лабораторных живот­ных.

Дата добавления: 2013-12-13