КАТЕГОРИИ: Архитектура-(3434)Астрономия-(809)Биология-(7483)Биотехнологии-(1457)Военное дело-(14632)Высокие технологии-(1363)География-(913)Геология-(1438)Государство-(451)Демография-(1065)Дом-(47672)Журналистика и СМИ-(912)Изобретательство-(14524)Иностранные языки-(4268)Информатика-(17799)Искусство-(1338)История-(13644)Компьютеры-(11121)Косметика-(55)Кулинария-(373)Культура-(8427)Лингвистика-(374)Литература-(1642)Маркетинг-(23702)Математика-(16968)Машиностроение-(1700)Медицина-(12668)Менеджмент-(24684)Механика-(15423)Науковедение-(506)Образование-(11852)Охрана труда-(3308)Педагогика-(5571)Полиграфия-(1312)Политика-(7869)Право-(5454)Приборостроение-(1369)Программирование-(2801)Производство-(97182)Промышленность-(8706)Психология-(18388)Религия-(3217)Связь-(10668)Сельское хозяйство-(299)Социология-(6455)Спорт-(42831)Строительство-(4793)Торговля-(5050)Транспорт-(2929)Туризм-(1568)Физика-(3942)Философия-(17015)Финансы-(26596)Химия-(22929)Экология-(12095)Экономика-(9961)Электроника-(8441)Электротехника-(4623)Энергетика-(12629)Юриспруденция-(1492)Ядерная техника-(1748) |
Окисление целлюлозы
Окисление Материалы и оборудование Соответствующие среды, фильтровальная бумага, пептон, колбы круглые плоскодонные на 100—150 мл, корковые пробки с отверстиями, почва, пинцеты, микроскопы и все необходимое для микроскопирования.
Вводные пояснения. Этот процесс наиболее широко распространен в природе, так как целлюлоза составляет подавляющую часть растительных остатков. В хорошо аэрируемой почве ее окисляют аэробные микроорганизмы (бактерии, грибы и актиномицеты). Они вырабатывают ферменты целлюлазу и целлобиазу, вызывающие гидролиз целлюлозы до глюкозы (см. 7.1.6), которую затем окисляют до СО2 и Н2О; промежуточными продуктами окисления являются оксикислоты: n С6H12O6 + n O2 → R – CHOHCOOH + CO2 + H2O R – CHOHCOOH + n O2 → CO2 + H2O Постановка опыта. Для воспроизведения процесса окисления целлюлозы в лабораторных условиях можно использовать метод Виноградского на гелевых пластинах. Для приготовления пластин из кремнекислого геля соляную кислоту плотностью (d) 1,9 в высоком цилиндре разбавляют водой до d = 1,10 (на каждые 500 мл концентрированной соляной кислоты следует добавить примерно 500 мл дистиллированной воды). Жидкое стекло (Na2O · 3SiO2 или K2Si03) наливают в другой высокий цилиндр и разводят дистиллированной водой до d= 1,06—1,08 (на 100 мл жидкого стекла следует прилить примерно 500 мл воды). Для установления плотности растворов пользуются ареометрами. Цилиндры и ареометры после разбавления жидкого стекла и кислоты тщательно отмывают. Полученные после разбавления соляную кислоту и жидкое стекло смешивают в равных объемах; при этом второе вещество осторожно прибавляют к первому при постоянном помешивании. Чтобы устранить возможность появления в толще геля чечевицеобразных полостей, полученный раствор нагревают до кипения, хорошо перемешивают и разливают в чашки Петри слоем не менее 0,7 см. Через 8—10 ч образуется гель. Дав ему хорошо застыть и обсохнуть сверху, чашки с застывшим гелем помещают в эмалированную кастрюлю или большой стеклянный сосуд и ставят под кран для промывания. На водопроводный кран надевают толстую каучуковую трубку, конец которой опускают на дно кастрюли или сосуда. Струя воды должна быть слабой. Промывают в течение 5—7 дней до исчезновения следов хлора 1%-ным AgNO3 в присутствии HNO3. Отмытые от следов хлора чашки с кремневыми пластинами окунают в кипящую воду, а при необходимости стерилизуют в кипятильнике Коха при 100 °С 3 раза по 30 мин через каждые 24 ч. Промытые и прокипяченные гелевые пластины пропитывают 2—3 мл среды следующего состава (г/200 мл дистиллированной воды): KNO3 – 2,5; К2НРО4 - 1,0; MgSO4 · 7H2O -0,5; NaCI - 0,5; FеSO4 · 7H2O – 0,01; MnSO4 · 4H2O - 0,01. Поверхность геля покрывают стерильным кружком фильтровальной бумаги, по которому раскладывают (по трафарету) 50 комочков почвы (диаметром 1—2 мм) или наносят суспензию почвы соответствующего разведения (см. 8.2.1). Чашки помещают во влажную камеру вверх дном и ставят в термостат при 28—30 °С. На 8—10-е сут вокруг комочков почвы появляются розовые, зеленые, желтые, буровато-желтые колонии бактерий. Плотность обрастания комочков почвы целлюлозоразрушающими микроорганизмами выражают в процентах. Число комочков почвы, разложенных на чашке, принимают за 100%. Затем подсчитывают процент комочков почвы, вокруг которых развились колонии целлюлозоразрушающих микроорганизмов. При отсутствии гелевых пластин микроорганизмы, окисляющие целлюлозу, можно выявить по методу Омелянского. Для этого в колбу Эрленмейера на 100—150 мл наливают 30 мл питательной среды, содержащей в водопроводной воде 0,1% NH4CI и 0,05% К2НРО4. К раствору добавляют 1/3 чайной ложки испытуемой почвы, погружают в колбу со средой складчатый фильтр конусом вверх (высота фильтра не должна превышать 3/4 высоты колбы) и ставят в термостат, при 28—30 ºС. На границе между воздухом и средой на целлюлозе будут развиваться аэробные целлюлозоразрушающие бактерии. Бумага постепенно станет слизкой, местами покроется желтыми пятнами колоний миксобактерий.
Микроскопирование. На препаратах, приготовленных из колоний, выросших на поверхности геля, можно обнаружить представителей разных родов. Наиболее часто встречаются следующие роды. Cytophaga (рис. 20, а) — слегка изогнутые, довольно длинные (3—8 мкм) палочки с заостренными концами. При старении переходят в укороченные палочки с округлыми концами, возможен переход и в шаровидную форму — миксоспоры или миксоцисты, покрытые слизью (покоящееся состояние). Разные виды этого рода образуют на клетчатке колонии в виде желтых, розовых, пурпурных или красно-коричневых пятен, иногда бесцветные. Cellvibrio — мелкие, слегка изогнутые в виде полумесяца неспорообразующие палочки с закругленными концами. Длина их 1,3—2 мкм, ширина— 0,2—0,5 мкм (рис. 20, б). Колонии Cellvibrio очень быстро распространяются по поверхности фильтровальной бумаги, окрашивая ее в желто-оранжевый цвет. Cellfalcicula — палочковидные клетки, утолщенные в центре, с заостренными концами (рис. 20, в). Образуют на целлюлозе слизистые зеленые колонии. Пигмент легко диффундирует в среду и окрашивает гель в з е леный цвет.
Polyangium и Sorangium — миксобактерии. Клетки представителей этих двух родов — цилиндрические палочки с тупыми, закругленными концами, при старении укорачиваются и образуют миксоспоры, которые собраны по 12—40 в спорангиоли — составные части плодовых тел. Плодовые тела Polyangium представлены на рис. 20, г. На клетчатке эти микроорганизмы образуют колонии в виде слизистого налета желтого, оранжевого или темно-коричневого цвета.
Trichoderma, Fusarium, Alternaria, Stachybotris, Cladosporium, Dematium — представители дейтеромицетов (грибов); эпифитный гриб Fumago (см. рис. 4, г) и другие грибы также интенсивно разлагают целлюлозу. Активное участие в разложении клетчатки принимают некоторые актиномицеты — Actinomyces violaceus, A. cellulosae и Micromonospora chalceae. Миксобактерии рода Sorangium легко обнаружить в подзолистых почвах под луговой растительностью и на окультуренных почвах. В этих же почвах при благоприятном режиме можно выявить и бактерии рода Cellvibrio, а на унавоженных — Cytophaga. В степных почвах наряду с грибами встречаются бактерии рода Polyangium.
Дата добавления: 2014-01-04; Просмотров: 1793; Нарушение авторских прав?; Мы поможем в написании вашей работы! Нам важно ваше мнение! Был ли полезен опубликованный материал? Да | Нет |