Основные требования к помещению медицинских лабораторий

Помещение клинико-диагностической лаборатории должно быть по возможности просторным и светлым, расположенным в том месте здания, где отсутствует вибрация. Нельзя размещать лаборатории вблизи котельных, дымовых труб и источников загрязнения воздуха.

Существенным для работы является освещение помещения (для этого необходимы большие окна и источники дополнительного освещения - предпочтительны лампы дневного света над каждым рабочим местом).

В каждой клинико-диагностической лаборатории должны быть: эффективная вентиляция, водопровод с холодной и горячей водой, трёхфазовый электрический ток, канализация, установки для очистки водопроводной воды.

Техника безопасности (ТБ)

Все сотрудники КЛД периодически проходят инструктаж по технике безопасности. При работе в КДЛ сотрудники используют персональные средства защиты – халаты и перчатки.

Все электроприборы должны быть заземлены. Не рекомендуется использовать электрические удлинители. Нельзя оставлять без надзора включенные приборы, аппараты и диагностические системы.

В КДЛ имеются определенные требования к чистоте воды, химической посуды, реактивов и реагентов, к аналитическим технологиям и лабораторным системам.

Имеются общие, стандартные и специальные требования к организации и проведению лабораторных исследований. Необходимо создать в лаборатории обстановку, обеспечивающую безопасность и облегчающую проведение всех лабораторных исследований. Это достигается путем рационализации всех этапов работы, использования современных аналитических систем и приборов, компьютеризации, соблюдения стандартных условий выполнения анализов и постоянного внутрилабораторного контроля качества лабораторных исследований.

Клинические образцы (кровь, моча и другой биологический материал) являются потенциальными источниками инфекции (например, гепатита, СПИДа) см.схему 1.2.

В процессе работы и после окончания работы предметные стекла, пипетки, пробирки погружают на одни сутки в банки с дезинфицирующим раствором, затем моют и кипятят.

Схема 1.2. Инфицирование медработников на работе

В клинико-диагностических лабораториях имеются и неопасные материалы, которые не имели контакта с биологическим материалом (например, бумага, реактивы, посуда и др.).

Потенциально опасные – это отходы, загрязненные биологическим материалом, а также отходы класса Г.

К отходам класса Г относятся просроченные реагенты и лекарственные средства, диагностические средства, отходы ртути, а также радиоизотопные отходы, если в лаборатории применяется радиоактивный анализ. Отходы различных классов собирают в отдельную тару. Их нельзя смешивать.

Все отходы, образующиеся в лаборатории, дезинфицируют и собирают в герметичные одноразовые упаковки, удаляют из лаборатории и помещают в контейнеры для данного класса отходов, установленные в определенном месте на территории ЛПУ.

Отходы класса Г собирают и упаковывают в зависимости от степени их токсичности в соответствии с «Временным классификатором токсичных промышленных отходов и методическими рекомендациями по определению класса токсичности промышленных отходов».

Кислоты и щелочи нейтрализуют и сливают в канализацию. Горючие вещества собирают в отдельную емкость.

Сбор, хранение и удаление радиоактивных отходов осуществляется в соответствии с нормативными документами, регламентирующими обращение с радиоактивными веществами.

Руководителем ЛПУ по согласованию с СЭС утверждается инструкция, устанавливающая правила обращения с отходами, персональную ответственность, схему сбора, промежуточного хранения и удаления отходов в зависимости от их количества и состава.

Методы разделения компонентов биоматериала

В КДЛ используются различные методы разделения компонентов биологического материала. К методам разделения относятся: экстрагирование, фильтрование, центрифугирование, электрофорез, хроматография.

Электрофорез - метод разделения заряженных частиц при движении их в растворе под действием внешнего электрического поля. Метод основан на свойстве ионизированных, т.е. несущих заряд, молекул двигаться к электродам.

В растворе более кислом, чем изоэлектрическая точка растворенного вещества, амфолит способен приобретать положительный или отрицательный заряд. Связывая протоны, вещество становится заряженным положительно и двигается к отрицательно заряженному катоду; при потере протонов, приобретая отрицательный заряд, молекула движется к положительно заряженному аноду.

Процедура электрофореза состоит в том, что гидратированный поддерживающий материал помещается в электрофоретическую камеру, содержащую буферный раствор. Избыток буферного раствора должен быть удалён. Проба наносится на поддерживающий материал. Устанавливается требуемая постоянная сила тока и напряжение. Процесс разделения протекает на определенный промежуток времени. Поддерживающий материал вынимают из камеры и быстро высушивают или помещают в закрепитель для предупреждения диффузии компонентов пробы. Зафиксированный поддерживающий материал окрашивают, чтобы выявить зоны отдельных белков. После удаления из белка избытка красителя поддерживающий материал высушивают или обрабатывают просветляющим реагентом.

Электрофоретическая подвижность молекулы прямо пропорционально её заряду и обратно пропорциональна размеру частицы и вязкости раствора (электрофоретического буфера).

После разделения фракций белков сыворотки крови должна следовать их идентификация и количественная оценка. Идентификация осуществляется по положению зон относительно места старта или по сопоставлению с параллельно разгоняемой пробой со стандартным образцом.

При электрофорезе белков сывортоке крови проба обычно делится на 5 фракций: альбумины, α₁- глобулины, α₂- глобулины, β-глобулины и γ- глобулины.

Количественная оценка фракций белков осуществляется с помощью прямой денситометрии или путем фотометрии элюатов отдельных полосок электрофореграммы.

Денситометрия состоит в сканировании просветленных, окрашенных и зафиксированных полосок носителя. Результаты выражаются в графической форме череды пиков и в цифровой форме процентных соотношений белковых фракций (для этого используются денситометры).

Хроматография -это совокупность методов разделения и анализа смесей веществ, основанных на различном распределении компонентов между подвижной (газ или жидкость) и неподвижной (жидкость, твёрдый сорбент или их смесь) фазами хроматографической системы.

В настоящее время используются различные виды хроматографии: бумажная, жидкостная, газовая, тонкослойная, ионообменная и др. виды.

Воснове механизма поверхностно-адсорбционной хроматографии лежатэлектростатичес-кие, водородные и дисперсионные взаимодействия. В газовой хроматографии осуществляется анализ низкомолекулярных веществ (метилового, этилового, изопропилового спиртов, а также таких газов, как кислород, азот, углекислый газ) с помощью так называемых «молекулярных сит».

В жидкостном варианте хроматографии используется три типа адсорбентов.

В ионообменной хроматографии отделение искомого вещества из исследуемой пробы, содержащей смесь, происходит на основе различий знака и величины ионного заряда неорганических ионов, аминокислот, белков, нуклеотидов.

Бумажная хроматография основана на использовании в качестве стационарной фазы различных сортов фильтровальной бумаги.

В тонкослойной хроматографии носителем является тонкий слой сорбента (силикагель, микроцеллюлоза, алюминий, сефадекс и др.), нанесенный на стеклянную или пластиковую пластинки.

Наиболее популярным вариантом жидкостной хроматографии в лабораторной аналитике является так называемая высокопроизводительная жидкостная хроматография (ВПЖХ), выполняемая в жидкостных хроматографах.

Дата добавления: 2014-12-25