Билет№8. 1.Понятие о дезинфекции хирургических инструментов и других изделий медицинского назначения, используемых в хирургии (методы и средства)

1.Понятие о дезинфекции хирургических инструментов и других изделий медицинского назначения, используемых в хирургии (методы и средства).

СТЕРИЛИЗАЦИЯ (sterilis - бесплодный, лат.) - пол­ное освобождение какого-либо предмета от микроорга­низмов путем воздействия на него физическими или химическими факторами. Стерилизация является основой асептики. Методы и средства стери­лизации должны обеспечивать гибель всех, в том числе высокоустойчи­вых, микроорганизмов, как патогенных, так и непатогенных. Наиболее устойчивы споры микроорганизмов. Поэтому возможность применения для стерилизации определенных средств оценивается наличием у них спороцидной активности, проявляемой в приемлемые сроки. Используемые в практике методы и средства стерилизации должны обладать следую­щими качествами: быть эффективными в плане бактерицидной и спороцидной ак­тивности; быть безопасными для больных и медперсонала; не должны ухудшать рабочие свойства инструментов. В современной асептике используются физические и химические ме­тоды стерилизации. К физическим методам относят: термические способы — обжигание и кипячение, стерилизацию паром под давлением (автоклавирование), стерилизацию горячим воздухом (сухим жаром), а также лучевую стери­лизацию. К химическим методам относят газовый способ и стерилизацию ра­створами химических препаратов. Обработка всех инструментов включает в себя последовательное вы­полнение двух этапов: предстерилизационной обработки и непосред­ственно стерилизации. Вид и объем предстерилизационной обработки определяется степенью инфицированности инструментов, а способ сте­рилизации прежде всего зависит от вида инструментов. а) Предстерилизационная подготовка складывается из обеззаражива­ния, мытья и высушивания. Ей подвергаются все виды инструментов. Вид и объем предстерилизационной обработки в недавнем прошлом определялся степенью инфицированности инструментов. Так, раньше существенно отличалась обработка инструментов после чистых опера­ций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенесших гепатит и в группе риска по СПИДу. Однако в настоящее время, учиты­вая высокую опасность распространения СПИДа, правила предстери­лизационной подготовки ужесточены и приравнены к способам обра­ботки инструментов, предусматривающим безусловную гарантию уничтожения вируса иммунодефицита человека. Следует отметить толь­ко, что инструменты после гнойных операций, операций у больных, пе­ренесших в течение 5 последних лет гепатит, а также при риске СПИДа обрабатываются отдельно от других. Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выпол­няются в перчатках! Обеззараживание. Непосредственно после использования инструменты погружаются в емкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они дол­жны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих средств используется 3% раствор хлорамина (экспозиция 40-60 минут) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут). После обез­зараживания инструменты промываются проточной водой. Мытье. Инструменты погружаются в специальный моющий (щелочной) ра­створ, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода. Температура раствора 50-60°С, экспозиция 20 минут. После этого инструменты моют щетками в том же растворе, а затем в проточной воде. Высушивание. Высушивание может осуществляться естественным путем. В послед­нее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при 80°С в течение 30 минут. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирур­гических инструментов. б) Собственно стерилизация. Все хирургические инструменты по особенностям использованных материалов и других качеств можно условно разделить на три группы: 1. металлические (режущие и нережущие), 2. резиновые и пластмассовые, 3. оптические. Стерилизация нережущих металлических инструментов. Основным методом стерилизации является стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве при стандартных ре­жимах. Возможно также использование кипячения. Однако инструмен­ты после операций по поводу анаэробной инфекции и в группе риска по гепатиту кипятить не рекомендуется. Некоторые виды простых инстру­ментов (пинцеты, зажимы, зонды и др.)> предназначенные для одноразо­вого использования, могут стерилизоваться лучевым способом. Стерилизация режущих металлических инструментов. Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью терми­ческих методов приводит к их затуплению и потере необходимых для хи­рурга свойств. Основным методом стерилизации режущих инструментов является холодный химический способ с применением растворов антисептиков. В последнее время в перевязочных режущие инструменты, как и нережущие, стерилизуются в сухожаровом шкафу, что приводит к некото­рому снижению их остроты, но обеспечивает абсолютную стерильность. Самыми лучшими способами стерилизации являются газовая стери­лизация и особенно лучевая стерилизация в заводских условиях. После­дний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал). Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов. Основным методом стерилизации резиновых изделий является авто­клавирование. При многократной стерилизации резина теряет свои элас­тические свойства, трескается, что является некоторым недостатком ме­тода. Допустимо также кипячение резиновых изделий в течение 15 минут. Пластмассовые изделия разового использования, а также катетеры и зонды подвергаются лучевой заводской стерилизации. Особо следует сказать о стерилизации перчаток. В последнее время наи­более часто используются одноразовые перчатки, подвергшиеся лучевой заводской стерилизации. При многократном использовании основным ме­тодом стерилизации является автоклавирование в щадящем режиме: пос­ле предстерилизационной обработки перчатки высушивают, пересыпают тальком (предупреждает слипание), заворачивают в марлю, укладывают в бикс и автоклавируют при 1,1 атм. в течение 30-40 минут или при 1,5 атм. — 15-20 минут. В экстренных случаях для стерилизации перчаток возможен следую­щий прием: хирург надевает перчатки и в течение 5 минут обрабатывает их тампоном, смоченным 96° этиловым спиртом. После надевания стерильных перчаток обычно их обрабатывают ша­риком со спиртом для снятия с поверхности талька или других веществ, препятствовавших слипанию резины. Стерилизация оптических инструментов. Основным методом стерилизации оптических инструментов, требую­щих наиболее щадящей обработки с исключением нагревания, является газовая стерилизация. Этим способом обрабатываются все инструменты для проведения лапароскопических и торакоскопических вмешательств, что связано с их сложным устройством и дороговизной. При стерилизации фиброгастроскопов, холедохоскопов, колоноскопов возможно применение и холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс - двухкомпонентный препарат на основе глутарового альдегида). Следует особо отметить, что наилучшим способом профилактики кон­тактной инфекции является использование одноразового инструмента­рия, подвергшегося лучевой заводской стерилизации! Стерилизация перевязочного материала и белья. К перевязочному материалу относятся марлевые шарики, тампоны, салфетки, бинты, турунды, ватно-марлевые тампоны. Перевязочный ма­териал обычно готовят непосредственно перед стерилизацией, используя специальные приемы для предотвращения осыпания отдельных нитей марли. Для удобства подсчета шарики укладывают по 50-100 штук в мар­левые салфетки, а салфетки и тампоны связывают по 10 штук. Перевязочный материал повторно не используется и после приме­нения сжигается. К операционному белью относятся хирургические халаты, просты­ни, полотенца, подкладные. Материалом для их изготовления являются хлопчатобумажные ткани. Операционное белье многократного примене­ния после использования проходит стирку, причем отдельно от других видов белья. б) Стерилизация Перевязочный материал и белье стерилизуют автоклавированием при стандартных режимах. Перед стерилизацией перевязочный материал и бе­лье укладывают в биксы. Существуют три основных вида укладки бикса: Универсальная укладка - Обычно используется при работе в перевязочной и при малых опера­циях. Бикс условно разделяется на секторы, и каждый из них заполняет­ся определенным видом перевязочного материала или белья: в один сек­тор помещаются салфетки, в другой - шарики, в третий - тампоны и т. д. Целенаправленная укладка - Предназначена для выполнения типичных манипуляций, процедур и малых операций. Например, укладка для трахеостомии, для катетери­зации подключичной вены. В бикс укладываются все инструменты, перевязочный материал ибелье, необ­ходимые для осуществления процедуры. Видовая укладка - Обычно используется в операционных, где требуется большое коли­чество стерильного материала. При этом в один бикс укладывают, на­пример, хирургические халаты, в другой - простыни, в третий - сал­фетки и так далее. В небольших количествах используется перевязочный материал в упаковках, прошедший лучевую стерилизацию. Существуют испециаль­ные наборы операционного белья одноразового использования (халаты и простыни), изготовленного из синтетических тканей, также подвергших­ся лучевой стерилизации.

2.Ошибки при определении группы крови. Причины невыявленной агглютинации и выявление агглютинации при ее фактическом отсутствии. Меры определения ошибок.

Определение групповой принадлежности с помощью реак­ции агглютинации может сопровождаться ошибками, которые ведут к невер­ной трактовке результатов. Все ошибки можно разделить на три группы: 1.низкое качество реагентов; 2.технические ошибки; 3.особенности исследуемой крови. 1. Стандартные изогемагглютинирующие сыворотки и стандартные эритроциты могут иметь низкие агглютинабельные свойства, что приво­дит к неверному толкованию результатов реакции. Во избежание подоб­ных ошибок следует следить за сроком годности реагента, условиями хранениями, а также их внешним видом (прозрачность сыворотки, отсут­ствие пленок, хлопьев, запаха гниения и пр.). 2. Ошибки технического характера связаны с несоблюдением или недо­статочно точным выполнением всех правил проведения реакции. а) Несоблюдение внешних условий (плохая освещенность, изменение температуры окружающей среды). Плохая освещенность мешает обнаружить агглютинацию или ее отсутствие. Повышение температуры свыше 25°С резко замедляет агглютинацию. При низкой температуре (менее 15°С) может произойти неспецифи­ческая агглютинация независимо от состава агглютининов и агглюти-ногенов, так называемая холодовая панагглютинация (агглютинация отмечается при реакциях с сыворотками всех групп крови). Это явле­ние происходит за счет наличия в сыворотке особого холодового агглю­тинина, который может давать реакцию агглютинации только при низ­ких температурах. б) Неправильное проведения самой реакции. Нарушение расположения сывороток, соотношения сыворотки и крови, слияние соседних капель и пр. создают возможность неправиль­ной интерпретации полученных результатов. Ранняя оценка результатов также может привести к ошибке, осо­бенно при наличии подтипа антигена А (слабого антигена А₂), дающего позднюю агглютинацию. в) Недобавление физиологического раствора. Несоблюдение этого простого правила (в капли, где произошла агг­лютинация, следует добавить изотонический раствор хлорида натрия) может привести к тому, что за специфическую агглютинацию будет при­нята ложная (псевдоагглютинация). Под термином псевдоагглютииация подразумевают способность эритроцитов склеиваться в монетные столбики или кучки с сохранени­ем мембран, независимо от их агглютинабельных свойств. Границы между форменными элементами хорошо видны под микроскопом, в от­личие от истинной агглютинации, при которой происходит разруше­ние мембран эритроцитов. Добавление 1-2 капель изотонического ра­створа хлорида натрия позволяет дифференцировать истинную агглютинацию от ложной. Псевдоагглютинация расходится довольно быстро, в то время как истинная агглютинация сохраняется прежней или становится более выраженной. г) Особенности исследуемой крови. Развитие неспецифической панагглютинации может быть связано не только с низкой температурой, но и с качествами самой крови. Панагглютинацию при бактериальном заражении исследуемой кро­ви в 1927 г. описал Томсен. Этот феномен (феномен Томсена) характе­ризуется агглютинацией крови с сыворотками всех групп и сыворот­кой собственной крови. Подобное явление неспецифической агглютинации может наблю­даться и в свежей крови, но оно встречается довольно редко и носит на­звание панагглютинации или аутоагглютинации. Сущность явления заключается в том, что сыворотка при комнат­ной температуре дает агглютинацию со всеми эритроцитами, даже со своими собственными (аутоагглютинация), а эритроциты в то же время дают агглютинацию со всеми сыворотками, даже с сывороткой группы AB(IV). Подобное явление описано при ряде заболеваний: болезнях крови, спленомегалии, циррозе печени, инфекционных заболеваниях и т. д. Описана панагглютинация и у здоровых людей, но крайне редко (0,07%). Явления панагглютинации и аутоагглютинации наблюдают­ся только при комнатной температуре; при температуре, близкой к тем­пературе человеческого тела, они обычно не выявляются. Во избежание ошибок необходимо не допускать определение груп­пы крови при температуре ниже 15°С. Если при определении группо­вой принадлежности агглютинация наблюдается с сыворотками групп 0(1), А(П) и В(Ш), всегда следует проводить реакцию с сывороткой груп­пы AB(IV). И только тогда, когда в этой капле не будет агглютинации, можно исключить панагглютинацию и отнести кровь к группе AB₀(IV). При наличии агглютинации с сывороткой AB(IV) необходимо подогреть кровь до 37°С и вести реакцию при этой температуре. Панагглютинация и аутоагглютинация исчезают, если определение групповой принадлежности проводить при 37°С. При некоторых заболеваниях отмечается снижение агглютинабельности агглютиногенов эритроцитов (хронические инфекционные забо­левания, онкологические заболевания, болезни крови и пр.). При этом так же, как и при наличии слабого антигена А₂, следует четко соблю­дать условия и время реакции.

Дата добавления: 2015-04-23