Ихтиотоксикология 3 страница

При необходимости обследуют подозреваемые источники загрязнения. От технологов на промышленных предприятиях получают данные о количестве и химическом составе сточных вод, проверяют надежность работы очистных сооружений и чистоту сбросных вод, используя материалы ведомственных химических лабораторий и бассейновых инспекций. Для расчета степени разбавления и установления зоны распространения вредных веществ, возможности сноса и смыва ядохимикатов и удобрений пользуются сводками гидрометеослужбы об уровне, направлении и скорости течения воды, ветровых волнениях водоема, температуре воздуха и воды, осадках и т. д. Учитывают время и места кормовых и нерестовых миграций рыб. Эти сведения позволяют определить условия, способствовавшие отравлению, и объяснить причины массового поражения того или иного вида рыб, возрастной их группы.

Клинический осмотр отравленных рыб проводят по схеме, принятой в ихтиопатологии. Осматривают 50–100 экземпляров рыб, а затем выборочно вскрывают 15–20 штук каждого вида и возраста.

В первую очередь изучают поведение рыб в естественном водоеме или в аквариуме, учитывают реакцию рыб на внешние раздражители, положение тела в воде, подвижность и координацию движений, наличие спазмов мускулатуры и судорог, частоту и ритм дыхания и т. д.

Многие отравления клинически могут протекать сходно с рядом других заболеваний. Поэтому для их дифференциации важное значение имеют последовательность возникновения, определенное сочетание и выраженность симптомов, а также характер течения болезни.

Острые отравления возникают внезапно, характеризуются кратковременным течением, массовой гибелью разных видов и возрастных групп рыб, ракообразных, лягушек, моллюсков и других гидробионтов. Кривая смертности рыб имеет характерную (языкообразную) форму с крутым подъемом в начале (первые 2–3 суток) и пологим спуском в последующие 10–30 суток интоксикации.

По тяжести проявления симптомов условно различают легкую, среднюю и тяжелую степень острого отравления. При легком течении (начальной стадии) интоксикации симптомы слабо выражены, отмечают нарушение возбудимости, ориентации рыб в воде, замедление или ускорение плавания, изменение частоты дыхания, «кашель».

Средняя степень (стадия иммобилизации) отличается бурным проявлением типичных признаков отравления: потерей равновесия, нарушением координации движения (плавание в боковом положении, по кругу, по спирали, и т. п.), тремором мускулатуры и судорогами.

Тяжелая степень (агония) характеризуется угнетением, полной депрессией, потерей рефлексов, замедлением движения, опусканием на дно и гибелью рыб.

Хронические отравления протекают длительно в стертой, иногда бессимптомной форме, сопровождаются постепенной гибелью отдельных рыб. Отмеченные выше симптомы появляются в отдаленные сроки и незначительны. Рыбы перестают питаться, теряют массу, отстают в росте и развитии, ослабляется их устойчивость к инфекционным и инвазионным болезням, а также неблагоприятным факторам среды.

При хронических отравлениях рыбы отличаются низкой упитанностью, обшей анемией и мышечной гидратацией, побледнением и атрофией печени и других органов.

Важное место в диагностике токсикозов занимают гематологические и биохимические показатели, отражающие избирательное действие ядовитых веществ. Так, для отравления фосфорорганическими и частично карбаматными пестицидами характерно сильное угнетение активности ацетилхолинэстеразы (АХЭ) крови и головного мозга рыб. Производные мочевины (диурон, монурон), гербициды вызывают гипохромную или гемолитическую анемию, а нитриты – метгемоглобинемию. Тяжелые металлы блокируют функциональные сульфгидрильные группы (SH-группы) ферментов с образованием соответствующих сульфидов. Неспецифические изменения в морфологическом составе крови, содержании сахара и гликогена, общего белка используют для диагностики в том случае, если они закономерно повторяются и носят стабильный характер.

Патологоанатомическое исследование включает в первую очередь количественный учет трупов рыб и других гидробионтов. При внешнем осмотре устанавливают вид, возраст рыб, регистрируют основные изменения внешних покровов и естественных отверстий. По трупному окоченению и степени разложения судят о времени гибели рыб. Следует иметь в виду, что большинство трупов рыб находятся на дне и там разлагаются. Всплывшие трупы прибиваются ветром к берегам, а больные рыбы являются легкой добычей для рыбоядных птиц. Замечено, что у окуневых рыб трупное окоченение наступает быстро, они всегда лежат брюшком вверх с широко раскрытым ртом и жаберными крышками. Карповые, наоборот, находятся на боку, рот и жаберная полость прикрыты.

При отравлении ядами нервно-паралитического действия (пестициды и др.) трупное окоченение наступает гораздо быстрее и сильнее выражено, чем веществами местно раздражающего и наркотического действия. С повышением температуры воды разложение трупов ускоряется, что затрудняет правильную оценку морфологических изменений. Многие отравления рыб сопровождаются повышением секреции слизи на коже и жабрах. Однако механизм этого процесса и состояние слизи бывает неодинаковым. Так, кислоты и тяжелые металлы способны коагулировать слизь, она становится густой, творожистой, плохо отделяется. Щелочи, соли щелочноземельных металлов, аммиак разжижают ее, в результате чего она быстро смывается, происходит истощение ее запасов и поверхность тела становится суховатой, а чешуя шероховатой.

Дифференцированно следует подходить и к оценке точечных, пятнистых и полосчатых кровоизлияний на туловище, плавниках, жаберных крышках, глазах; их обнаруживают не только при отравлениях, но и ряде других болезней. Так, серповидные кровоизлияния на склере глаз служат одним из признаков асфиксии. Выраженное пучеглазие, ерошение чешуи, брюшная водянка встречаются только при некоторых токсикозах смешанного характера, например при токсической водянке. В этих случаях отмечено помутнение, изъязвление и прободение роговицы глаза. В то же время многие резорбтивные яды (пестициды и др.) не вызывают существенной местной реакции.

Жабры являются важнейшим органом всасывания и выведения ядовитых веществ из организма рыб. Различные токсиканты оказывают на жабры рефлекторное и раздражающее действие. Поэтому к постоянным компонентам большинства токсикозов рыб относят различные формы нарушения кровообращения в жаберном аппарате: застой крови, цианоз, кровоизлияния, анемия, токсический отек. Микрокартина проявляется отслоением и набуханием респираторного эпителия, гипертрофией и пролиферацией слизистых и хлоридных клеток, дистрофией эпителия, что приводит к утолщению лепестков, сглаживанию рисунка, увеличению объема и дряблости жабр, выпячиванию их из-под жаберных крышек. Вещества локального действия в высоких концентрациях вызывают диффузную десквамацию эпителия и некроз ткани. При хроническом отравлении некоторыми веществами (например, аммиаком) наблюдается очаговый некроз жабр.

При вскрытии брюшной полости обращают внимание на ее содержимое, топографию и внешний вид органов, их консистенцию, размеры, степень кровенаполнения, окраску крови, серозных и слизистых оболочек, а также наличие запаха того или иного химического вещества.

В брюшной полости при острых отравлениях нередко обнаруживают прозрачный транссудат, иногда с примесью крови. Брюшина и серозные покровы органов отечны, под капсулой просвечивают инъецированные сосуды и изредка встречаются мелкоточечные кровоизлияния. Внутренние органы, особенно печень и почки кровенаполнены, темно-красного цвета, дряблой консистенции, селезенка не увеличена, темно-вишневого цвета. Околосердечная полость, венозный синус и предсердие нередко (например, при действии пестицидов) сильно переполнены свернувшейся кровью. Заметные изменения в слизистой кишечника наблюдают только при поступлении ядов перорально. В головном мозге обнаруживают отек и дистрофию нейронов, застойную гиперемию.

Поскольку патологоанатомические изменения недостаточно специфичны, а лишь ориентируют на наличие отравления, то для их уточнения и более достоверной оценки проводят гистологические исследования. Это дает возможность дифференцировать отравления от патологических процессов, вызванных другими причинами, а также различать формы токсикозов.

Биологические исследования. Косвенным указанием на наличие отравления могут служить данные гидробиологических исследований: изменение биомассы планктона и бентоса, нарушение поведения и гибель беспозвоночных, исчезновение из биоценоза некоторых видов животных и растений. Например, к инсектоакарицидам очень чувствительны водные ракообразные (дафнии, циклопы) и личинки насекомых; к гербицидам — высшие водные растения; к альгицидам — водоросли и т. д. Поэтому они могут служить тест-объектами для установления загрязнения водоема соответствующими токсикантами.

Для доказательства токсичности загрязненной водной среды ставят биопробы непосредственно в водоемах («рыбная проба») – в делевых садках. Последние устанавливают в водоем, помешают в них чувствительных к токсикантам рыб (окунь, ерш, форель и др.) и ведут наблюдения за их поведением. Подобное исследование можно провести в аквариумах или бассейнах, заполнив их водой из водоемов, сточной водой в разных разведениях и др.

Токсичность нативного патологического материала или экстрактов ядов из органов рыб определяют на лабораторных животных (рыбах, мышах, крысах, кошках, лягушках, насекомых) путем скармливания, парентерального введения или прямого контакта с материалом. Выбор животных и методика постановки биопробы зависят от характера предполагаемого ядовитого вещества. Например, при подозрении на пестицидное загрязнение опыты ставят на комнатных мухах, дрозофилах, комарах, используя следующие методы.

Метод сухой пленки. Пестициды извлекают из исследуемого объекта ацетоном. Экстракт фильтруют в чашку Петри, испаряют и в чашку помещают 20- 30 насекомых. Появление у них нервно-паралитических явлений и отсутствие их у контрольных указывает на наличие ядохимикатов.

Метод кормления. Внутренние органы отравленных рыб растирают в ступке с сахарным песком и скармливают насекомым. Проба считается положительной, если все насекомые погибают с типичными признаками судорог и параличей.

Метод водных взвесей заключается в выдерживании (экспонировании) комаров, дафний, циклопов, инфузорий или рыб в водных суспензиях органов.

Органолептические исследования основаны на свойстве многих химических веществ издавать запахи, которые определяют по пятибалльной шкале. Концентрации большинства сильно пахнущих веществ, оцениваемых органолептически, как правило, находятся на уровне или ниже границы, при которой эти вещества оказывают токсический эффект. Это обстоятельство весьма важно не только для диагностики отравлений, но и для ветеринарно-санитарной экспертизы рыбы.

Исследование рыбы на наличие постороннего запаха и привкуса проводят пробой варки. Желательно установить запахи в мясе и внутренних органах рыб, проваривая их вместе или раздельно. Берут около 100 г мелко нарезанных кусочков непотрошеной рыбы или отдельно мяса и внутренних органов, заливают двойным количеством воды и кипятят до 5 мин в колбе, прикрытой стеклом. После закипания воды проверяют запах, приподнимая стекло, а в конце пробы оценивают запах, привкус и прозрачность бульона. По специфическому запаху можно обнаружить фенол и его производные (хлорфенолы), нефть и продукты ее перегонки (бензин, керосин, соляровое масло и др.), смолы и дегти, канифоль, терпены, камфору, тимол, ментол, эфирные масла, смоляные кислоты, альдегиды (формальдегид, параформ, метальдегид), хлор- и фосфорорганические пестициды и др.

Метод условных рефлексов. Данный метод предложен В. II. Лукьяненко и Б. А. Флеровым. Суть метода: исследование условнорефлекторной активности рыб при воздействии токсических веществ. Достоинства: используются новые стороны жизнедеятельности организма, высокая чувствительность, возможность установления ПДК для нервных ядов. Недостатки: нет критерия биологической нормы.

Метод рыбной пробы. Метод предложен Я. Я. Никитским и В. И. Долговым в 1913 г. Суть метода: рыб помещают в раствор с заданным количеством испытуемого вещества и держат ее до гибели. Достоинства метода: скорость, простота, дешевизна, возможность получить, хотя и приблизительные, сведения о токсичности среды. При этом возможно менять концентрацию вещества и время эксперимента. Недостатки: не дает сведений о хроническом влиянии малых концентраций, так как учитывается преимущественно острое отравление. Не позволяет определять ПДК токсиканта.

Физиолого-биологический метод (разработан Н. С. Строгановым и др., 1937—1967 гг.). У гидробионтов определяют выживаемость, питание и рост, газообмен, показатели крови, дыхательный и сердечный ритм, размножение и выживаемость молоди, плодовитость и качество потомства.

Достоинства метода: получается разносторонняя информация о нарушениях основных жизненных функций организма. Акцент на обмен веществ и тесно связанные с ним размножение, плодовитость и качество потомства.

Лабораторные исследования. Важнейшим условием получения достоверных результатов исследований является правильный и своевременный отбор материала для исследования.

4.3. Методика сбора материала для лабораторных исследований при подозрении на отравление рыб

При обнаружении гибели рыб в водоемах работники рыбоохраны, специалисты, обслуживающие рыбохозяйственные водоемы, должны немедленно сообщить вышестоящим учреждениям о гибели рыб и квалифицированно провести отбор проб воды, грунта, планктона и рыб и немедленно отправить их в соответствующие учреждения для анализа.

Отбор проб воды является важным и ответственным этапом исследования. Ошибки, допущенные при взятии проб, могут совершенно обесценить дальнейшую работу и привести к неправильной оценке. Пробы воды надо брать так, чтобы образец соответствовал составу всей массы исследуемой воды.

Пробы воды в реках отбирают на расстоянии 1–2 м от берегов и на середине реки на быстринах, перепадах, водосбросах и водоспусках. При отборе проб необходимо исключить элементы случайности (временная взмученность воды, поверхностный слой воды со случайными загрязнениями). Пробы следует брать с поверхностных (30–50 см от зеркала воды) и глубинных слоев. Для взятия глубинных проб воды применяют батометры различных конструкций. Наиболее распространенным является батометр Рутнера. Отбор проб из стоячих вод (озер, прудов и водохранилищ) проводят в различных местах и на различных глубинах, пользуясь для этого глубинными пробоотборниками.

Отбор сточных вод. Состав промышленных сточных вод зависит от хода процессов на заводе. Поэтому однократного взятия пробы воды обычно недостаточно. Берут среднюю смешанную пробу (за час, смену, сутки). Объем пробы зависит от числа определяемых компонентов. Для полного анализа следует брать 2 л воды.

Основную пробу берут обычно в бутыли емкостью 2 л. Основным условием при взятии проб воды является чистота тары и пробки. Посуду следует предварительно тщательно вымыть. Стеклянные и полиэтиленовые бутыли моют концентрированной технической соляной кислотой; для обезжиривания используют синтетические моющие вещества. После этого посуду ополаскивают дистиллированной водой. Прежде чем взять пробу, посуду следует ополоснуть несколько раз водой, подлежащей отбору.

Склянки для взятия пробы на кислород объемом 100–150 мл должны быть обязательно с притертыми пробками. Заполняют склянки исследуемой водой следующим образом: резиновую трубку от батометра опускают до дна склянки и заполняют ее водой, не допуская попадания пузырьков воздуха.

Каждая проба воды должна быть снабжена этикеткой, на которой указывают место и время, глубину, горизонт взятия пробы, температуру воды, фамилию и должность лица, проводившего отбор.

В зимнее время при транспортировке проб необходимо предусмотреть их утепление.

Для получения достоверных данных гидрохимического анализа отобранных проб воды исследование должно быть проведено как можно скорее. Ряд определений желательно выполнить на месте: запах, привкус, содержание кислорода, наличие сероводорода, углекислоты, активная реакция среды, кислотность, так как эти показатели могут со временем заметно измениться. Если при пересылке проб воды в лабораторию в теплое время потребуется свыше суток, то рекомендуется пробы воды консервировать.

Консервирование проб. Пробу на кислород в количестве 30–50 мл фиксируют, вливая в нее 1 мл хлористого марганца и 1 мл щелочного раствора йодистого калия. Склянку закрывают плотно пробкой и тщательно перемешивают 25–30 раз. Затем ставят в темное прохладное место. Не позднее чем через сутки следует провести анализ.

Пробу на БПК (биохимическое потребление кислорода) в количестве 30—50 мл берут в склянку из темного стекла, закрывают, держат при температуре 20° в течение 5 суток, после чего фиксируют 1 мл хлористого марганца и 1 мл щелочного раствора йодистого калия и исследуют.

Пробы для определения взвешенных веществ, нитритов, нитратов, фосфатов консервируют, добавляя 2 мл хлороформа на каждый литр, после чего воду хорошо взбалтывают.

Пробы для определения аммиака и хлоридов консервируют 2 мл 25%-ной серной кислоты на 1 л.

Пробы на фенолы при концентрации его ниже 0,5 мг/л не консервируют, при более высокой концентрации прибавляют 4 мл 20%-ной NaOH на 1 л. Исследование следует проводить в течение 48 часов.

Пробы на фториды и хлориды отбирают в полиэтиленовые бутыли и консервируют 2–4 мл хлороформа на 1 л.

Пробы на цианиды консервируют щелочью до рН 11. Пробы, содержащие цианиды, нельзя консервировать кислотами.

Пробы на тяжелые металлы отбирают в бутыли из белого стекла или полиэтиленовые бутыли и консервируют 2–5 мл хлороформа. Пробу на магний не консервируют.

Пробы на железо консервируют, добавляя 5 мл азотной кислоты на 1 л воды. Для определения различных форм железа пробы консервируют ацетатным буферным раствором.

Пробы на анионоактивные синтетические моющие средства (детергенты) консервируют 2–4 мл хлороформа на 1 л воды.

Пробы на нефтепродукты не консервируют.

Пробы на ядохимикаты. При подозрении на пестицидное загрязнение водоема пробы воды берут с разных участков водоема у берегов. Их не консервируют и исследуют в течение суток. В сопроводительном письме указывают вид применяемого пестицида, сроки, кратность и масштабы применения.

Отбор проб грунта. Кроме проб воды, из водоема следует взять пробы грунта. Берут их в количестве 2 кг с поверхности дна дночерпателем Экмана или Кирпич-никова. Затем высушивают на воздухе, растирают в ступке, просеивают через мелкое сито и упаковывают в широкогорлые банки или полиэтиленовые мешочки в количестве 500 г воздушной сухости.

Отбор проб на планктон. Планктон, так же как и грунт, способен кумулировать ряд токсических веществ: соли тяжелых металлов, пестициды и прочие соединения.

Для получения планктона воду в количестве 50–100 л фильтруют через планктонную сетку «мельничный газ» и собирают его.

Рыба. Для исследования пригодна исключительно свежая рыба. Больных или погибших рыб (не менее пяти экземпляров каждого вида), предназначенных для химико-аналитического исследования, доставляют в лабораторию по возможности живыми или недавно погибшими. Для контроля обязательно берут того же вида и возраста рыб из благополучного водоема. Если доставить свежих рыб невозможно, то их консервируют 96°-ным этиловым спиртом. Консервировать материал (рыб) формалином, глицерином, карболовой кислотой, сулемой, денатурированным спиртом и другими веществами нельзя. Вместе с пробами высылают 50–100 г спирта, которым консервировали материал.

Каждый экземпляр рыб снабжают этикеткой с подробными сведениями о месте и времени вылова или гибели.

Весь взятый для исследования материал: пробы воды, грунта, планктона и рыб упаковывают в тару, опечатывают и вместе с актом обследования водоема и направлением высылают нарочным в соответствующее учреждение. Химический анализ может быть проведен только на строго определенное вещество, в крайнем случае – на группу веществ.

4.4. Стандартная схема ихтиотоксикологических исследований. Метод функциональных нагрузок

Многообразие задач, стоящих перед ихтиотоксикологией, и методов их решения приводит к необходимости принятия унифицированной схемы проведения ихтиотоксикологических исследований для получения возможно более полного объема информации и сопоставимых данных по токсичности попадающих и водоемы веществ и определения их ПДК.

В основу такой стандартной схемы ихтиотоксикологического эксперимента положены три последовательно проводимые опыты: острый, подострый и хронический.

Острый опыт. Проводится для предварительной оценки степени токсичности исследуемого вещества и остро токсичной (явно не допустимой) концентрации вещества, поступающего в рыбохозяйственный водоем. Оценка токсичности вещества проводится методом рыбной пробы. Показателем токсичности служит гибель подопытных рыб. При постановке острого опыта необходимо подробно описывать поведение и внешние симптомы отравления рыб данным веществом или группой веществ. После гибели рыб подвергают патоморфологическому обследованию.

При описании результатов острого опыта указываются температура токсического раствора, содержание в последнем кислорода, жесткость и pH воды, а также вид, возраст подопытных рыб, их функциональное состояние и длительность адаптации к экспериментальным условиям. Для пресноводных рыб опыт целесообразно проводить при относительно высокой температуре раствора и относительно низком содержании в нем кислорода, учитывая их естественные колебания в естественном водоеме.

В качестве тест-объекта следует использовать наиболее устойчивый вид рыб ихтиофауны данного водоема.

Продолжительность острого опыта обычно составляет 24 часа. Испытание каждой концентрации вещества целесообразно проводить на одинаковом количестве рыб (не менее 10 экз.)

Подострый опыт. Ставится для выявления путей действия токсиканта на рыб и механизмов развития отравления организма с тем, чтобы выбрать адекватный метод определения пороговой концентрации исследуемого вещества в хроническом опыте.

Используют обычно концентрации, составляющие 0,5-0,1 летальной концентрации, установленной в хроническом опыте. Опыт проводится на наименее устойчивом виде рыб. Длительность опытов от 10 до 30 сут. Поскольку токсикодинамика исследуемого вещества не известна, проводят исследования показателей, интегрально отражающие состояние организма. Такими показателями являются: прирост живой массы, уровень пищевой возбудимости и интенсивность потребления кислорода, физиолого-биохимические исследования белкового, углеводного и жирового обмена, активность важнейших ферментативных систем, электрофизиологические тесты, характеризующие состояние центральной нервной, сердечно-сосудистой, и дыхательной систем, гематологические показатели, поведенческие реакции и д.т.

Хронический опыт. Это заключительный этап ихтиотоксикологического исследования. Его задача выявить пороговую концентрацию веществ и ПДК.

Исходную концентрацию и диапазон концентраций выбирают, руководствуясь данными острого и подострого опытов. Продолжительность хронического опыта от 1 до 3 месяцев, но не более.

Поскольку фактор времени в ихтиотоксикологических исследованиях приобретает решающее значение, для сокращения продолжительности опытов целесообразно использовать метод функциональных нагрузок и на этом фоне определять состояние индикаторной функции (избирательно поражаемой). Метод функциональных нагрузок позволяет выявить не только уже имеющиеся нарушения в деятельности той или иной функциональной системы, но и возможности организма адаптироваться к стрессирующим воздействиям факторов внешней среды в условиях хронического действия малых концентраций токсических веществ. То есть речь идет об определении патологических сдвигов в организме, физиолого-биохимические показатели функционального состояния которого остаются в «диапазоне нормальных колебаний». Для этого используют различные нагрузки, что позволяет оценить состояние регуляторных систем организма, обеспечивающих сохранение постоянства внутренней среды.

Метод функциональных нагрузок заключается в следующем. После воздействия того или иного токсического вещества на организм резко изменяются условия его существования (температурный и газовый режимы, активная реакции среды и т. д.). Изменение (ухудшение) условий существования рыб выступает в роли дополнительной функциональной нагрузки на организм. В результате скрытые патологические сдвиги в организме, вызванные хроническим воздействием на него малых концентраций токсиканта, проявляются.

В качестве функциональных нагрузок для рыб могут быть использованы экспериментально вызванные инфекции и инвазии, повышенные физические нагрузки, обусловленные длительным вынужденным плаванием, голодание, пребывание в воде повышенной температуры или с пониженным содержанием кислорода и др.

Данные, накопленные отечественными санитарными токсикологами, показывают, что метод функциональных нагрузок обладает высокой эффективностью и позволяет в кратчайший срок выявить ранние патологические сдвиги в организме, обусловленные действием пороговых концентраций токсических веществ.

5. КЛАССИФИКАЦИЯ СТОЧНЫХ ВОД

С ростом промышленности и химизацией различных отраслей в водоемы могут поступать разнообразные по своему химическому составу и токсическому действию сточные воды, содержащие яды.

Яды (токсиканты) – чужеродные вещества (ксенобиотики), способные вступать во взаимодействие с различными структурами организма и вызывать нарушение его жизнедеятельности, переходящее при определенных условиях в болезненное состояние.

Чтобы разобраться в огромной массе токсикантов и целенаправленно осуществлять мероприятия по профилактике отравлений рыб, токсиканты классифицируют.

В настоящее время нет единой, универсальной классификации сточных вод и их компонентов.

Более приемлемой в настоящее время является классификация Е. А. Веселова (по химической природе вещества). Сточные воды в этой классификации по действию их на водоем делят на содержащие органические и неорганические загрязнители.

Органические загрязнители в сточных водах могут представлять собой: 1) первичные продукты животного происхождения; 2) первичные продукты растительного происхождения; 3) продукты термической переработки твердого топлива (каменного угля, торфа, дерева); 4) нефть, нефтепродукты и их компоненты; 5) органические кислоты; 6) кетоны и спирты; 7) фенолы; 8) органические красители и их компоненты; 9) поверхностно активные вещества (в том числе моющие средства); 10) пестициды (в том числе инсектициды, гербициды, фунгициды, нематоциды, зооциды, репелленты, стимуляторы и ингибиторы роста растений и др.).

Из неорганических загрязнителей в водоемах могут быть: 1) сероводород и сернистые соединения; 2) неорганические кислоты и щелочи; 3) неорганические яды; 4) соли натрия, кальция, магния, аммония (хлориды, сульфаты, нитраты); 5) взвешенные минеральные вещества.

Каждая из этих групп, в свою очередь, подразделяется на сточные воды со специфическими ядовитыми свойствами и сточные воды без специфических ядовитых свойств.

Сточные воды без специфических токсических веществ содержат органические загрязнители и, как отмечает автор, являются преимущественно отходами предприятий пищевой промышленности. Они характеризуются большим содержанием нестойких органических веществ и наличием продуктов их анаэробного распада. В результате гнилостных процессов и брожения в водоеме скапливаются ядовитые газы: сероводород, метан, а также уксусная и молочная кислоты. В результате резко падает содержание кислорода в водоеме, что приводит к заморам.

Сточные воды со специфическими токсическими веществами содержат меньшее количество органических веществ, но также могут вызывать гнилостные процессы и создают дефицит кислорода в водоеме. Содержащиеся в таких водах токсические вещества оказывают специфическое действие на гидробионтов.

Классификация Е.А. Веселова не отражает влияние различных сточных вод на гидробионты с физиологической точки зрения, этот пробел восполняет классификация В.В. Метелева (по характеру повреждающего эффекта).

Согласно этой классификации все яды подразделяются на следующие группы:

I. Яды локального действия:

а) неорганические вещества: хлор; перекись водорода, марганцовокислый калий, озон, кислоты и щелочи, соли тяжелых металлов (марганец, никель, хром, мышьяк, кадмий, свинец, железо, цинк, ртуть, медь, серебро), борная кислота;

б) органические вещества: формальдегид, органические кислоты и краски, дубильные вещества, детергенты.

Яды локального действия разрушают респираторный эпителий жабр, вплоть до полного отделения эпителия от нитей жаберных пластинок, иногда вызывают кровотечение из жабр, а также изменения со стороны пигментных клеток-хроматофоров. Кожные покровы и жабры под действием этих ядов обильно покрываются слизью, препятствующей газообмену. В результате всех этих изменений в организме рыб возникает недостаток кислорода, накопление углекислоты. При этом у рыб увеличивается частота и глубина дыхания, но, несмотря на это, прогрессирующее поражение респираторного эпителия вызывает удушье или асфиксию.

Дата добавления: 2014-11-29