Материалы и методы исследования

ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭЛАСТАЗНОЙ АКТИВНОСТИ В СЫВОРОТКАХ КРОВИ И АМНИОТИЧЕСКОЙ ЖИДКОСТИ У БЕРЕМЕННЫХ С ИНФЕКЦИОННО-ВОСПАЛИТЕЛЬНЫМИ ПРОЦЕССАММИ

Клименкова Ю.Г. (6 курс, лечебный факультет)

Научные руководители: к.м.н., доцент Занько Ю.В.,

к.м.н., доцент Окулич В.К.

УО «Витебский государственный медицинский университет»

Актуальность. Многие инфекционные заболевания могут стать причиной развития осложнения при беременности. Приспособительную роль при инфекционном процессе выполняют типовые патологические процессы, одним из которых является воспаление. При этом в крови повышается уровень медиаторов воспаления, таких как гистамин, интерлейкины, ФНО-α, а также повышается и уровень нейтрофильной эластазы [1]. Наибольшее ее количество определяется в азурофильных цитоплазматических гранулах нейтрофилов. Незначительные концентрации определяются в моноцитах и Т-лимфоцитах [2]. Эластаза выступает как активный компонент иммунитета, участвуя в расщеплении белковых компонентов бактериальной стенки [3].

На первом месте среди причин, вызывающих многоводие и маловодия, стоит инфекционное поражение фетоплацентарной системы. Во всех случаях многоводия инфекционного генеза выявляется воспалительная инфильтрация плаценты и/или плодных оболочек (плацентит, хориоамнионит), гиперпластическая перестройка микроворсинок амниального эпителия. У беременных женщин с острыми и обострениями хронических инфекционно-воспалительных заболеваний, возникших в III триместре (35-36 нед.) маловодие развивается на фоне париетального мембранита. При этом имеют место воспалительные изменения плодных оболочек с обширным некрозом амниального эпителия и обсемененностью патогенной микрофлорой родовых путей [4].

Ранняя диагностика инфекционного процесса является залогом своевременного лечения и предотвращения развития осложнений, которые представляют угрозу не только для беременной женщины, но и для плода.

Разработка новых методов определения протеолитической активности ферментов в биологических жидкостях, а также изучение изменения данной активности при различных патологических процессах представляет научный и практический интерес.

Цель исследования. Определить уровень эластазной активности в биологических средах беременных женщин с инфекционной патологией.

Забор сывороток крови брали у женщин, находившихся на лечении либо родоразрешении на базе родильного дома №3 города Витебска. Для исследования протеолитической активности было взято 23 сыворотки крови и 12 проб амниотической жидкости (АЖ) у беременных женщин с инфекционной патологией. В качестве контрольной группы использовались сыворотки беременных без инфекционной патологии.

Для определения эластазной активности пробы, содержащие сыворотку крови или АЖ, перед использованием осаждали центрифугированием в течение 7 минут (10 тыс об/мин; центрифуга MICRO 120). Для постановки метода использовали эластин-Конго красный (диаметр частиц 37-75 микрон, производство Sigma) в концентрации 0,8 мг на 1 мл буфера как субстрат для фермента, сыворотки и 1 серию буферных растворов (0,2 М солянокислый трис-буфер) с рН 7,4 (нейтрофильная эластаза с оптимумом рН 7,4) и с рН 8,8 (панкреатическая эластаза с оптимумом рН 8,8). Эластаза расщепляла эластин, и конго-красный переходил в раствор, изменяя его цвет с бесцветного на красный с максимальным спектром поглощения 495 нм [5].

Для удобства постановки вместо пробирок использовались эппендорфы. В один ряд эппендорфов вносили последовательно: 400 мкл раствора эластин-Конго красного на трис-HCl буфере рН 7,4 (8,8) и 100 мкл сыворотки крови или АЖ. Контролем служили пробы, содержащие буферный раствор в количестве 400 мкл и 100 мкл сыворотки крови или АЖ. Далее проводили инкубацию проб в термостате при t=37º C в течение 20 часов. Затем пробы извлекали из термостата и центрифугировали в течение 7 минут (10 тыс об/мин; MICRO 120) для осаждения оставшегося эластина-Конго красного в виде не разрушенных частиц. Из надосадка брали в дублях по 150 мкл раствора и переносили в лунки 96 луночного полистиролового планшета. Планшет помещали в многоканальный спектрофотометр Ф300, где при длине волны 492 нм определяли оптическую плотность в лунках. Результат рассчитывался как разница оптических плотностей опытных проб и соответствующих им контрольных.

Статистическую обработку полученных данных проводили с использованием программ «Microsoft Excel 2007», «Statgrap 2.1».

Дата добавления: 2015-05-06