Предстерилизационной обработки

Техника постановки проб для оценки качества

Приготовление реактивов.

СТЕРИЛИЗАЦИОННОЕ ОБОРУДОВАНИЕ

ЧАСТЬ V

Стерилизация – это процесс, направленный на уничтожение микроорганизмов, так как наибольшую стабильность и опасность во внешней среде представляют споры некоторых патогенных бактерий. Поэтому стерилизующие устройства и химические вещества должны обладать бактерицидным, спороцидным и ви‑рулицидным эффектами. Все действия, направленные на стерилизацию, должны проводиться на основании МУ 287–113 от 30 декабря 1998 г. Стерилизации должны подвергаться все медицинские и косметические изделия, которые соприкасались с поверхностью раны, контактировали с кровью и другими биологическими жидкостями или препаратами для инъекций, включая медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасались со слизистой оболочкой и могли вызвать ее повреждение. Стерилизация включает в себя три основных звена, таких как дезинфекция, предстерилизационная очистка и собственно стерилизация. Также можно выделить две подгруппы: контроль дезинфекции и предстерилизационной очистки и контроль стерилизации. Стерилизация является наиболее важным звеном асептики. Асептика – это система мероприятий, направленных на предотвращение попадания патогенных микроорганизмов в рану, ткани, органы, полости тела больного при хирургических вмешательствах, перевязках, эндоскопических и других лечебных и диагностических манипуляциях. Асептика тесно связана с антисептикой.

Азопирамовая проба

На 1 л раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина – 1,5 г соляно‑кислого анилина. Вещества смешивают в сухой по суде и заливают 95 %‑ным этиловым спиртом до объема 1 л. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе при температуре +4 °C (в холодильнике) 2 месяца, в темноте при комнатной температуре – не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3 %‑ной перекиси водорода.

Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1–2 ч. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше 25 °C рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30–40 мин. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов и т. д.).

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют путем нанесения 2–3 капель на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к использованию; если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться нельзя.

Амидопириновая проба

Смешивают равные количества 5 %‑ного спиртового раствора амидопирина, 30 %‑ного раствора уксусной кислоты и 3 %‑ной перекиси водорода.

Реактив готовят перед использованием.

5%‑ный спиртовой раствор амидопирина готовят на 95 %‑ном этиловом спирте. Данный раствор может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

30 %‑ный раствор уксусной кислоты и 3 %‑ный раствор перекиси водорода готовят на дистиллированной воде.

Фенолфтал еиновая проба

Готовят 1 %‑ный раствор фенолфталеина. Спиртовой раствор фенолфталеина может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

Методика постановки проб

Контролируемое изделие протирают тампоном, смоченным реактивом, или 2–3 капли реактива пипеткой наносят на изделие.

В шприц вводят 3–4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем, для того чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь. Реактив в шприце оставляют на 0,5–1,0 мин, после чего вытесняют на марлевую салфетку.

При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц и последовательно, меняя иглы, пропускают реактив через них, выдавливая на марлевую салфетку 3–4 капли.

При проверке качества очистки катетеров и других полых изделий реактив вводят внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия на 0,5–1,0 мин, после чего его сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия.

При постановке азопирамовой пробы при наличии следов крови немедленно или в течение 1 мин появляется вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово‑сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Методы стерилизации изделий медицинского назначения Стерилизация является третьим этапом обработки изделий медицинского назначения после дезинфекции и предстерилиза‑ционной очистки. Существуют физические и химические методы стерилизации. Физический метод подразумевает применение температурных (пара под давлением, сухого жара), радиационных (частиц гамма‑излучения) факторов для стерилизации. Химический метод осуществляется за счет применения газообразных и жидких химических препаратов. Соответственно стерилизация делится на холодную (при температуре ниже 100 °C) и горячую (выше 100 °C). К первой относятся радиационный и химический способы, а ко второй – термический.

Классификация устройств для стерилизации Основное оборудование. 1. Автоклавы:

1) шкафные и цилиндрические (вертикальные – загружают и выгружают изделия сверху; горизонтальные – непроходные (однодверные) и проходные (двухдверные));

2) стационарные и автоклавы для станций ЦСО;

3) электронный (оснащенный полной автоматизацией всего цикла стерилизации) и механический;

4) автоматический, полуавтоматический и ручной;

5) малые (вместительностью от 5 до 40 л);

6) средние (вместительностью от 40 до 350 л);

7) большие (вместительностью от 350 до 1000 л);

8) сверхбольшие (вместительностью от 1000 л и выше – автоклавы для станций ЦСО).

2. Сухожаровые шкафы:

1) круглые и прямоугольные;

2) вертикальные и горизонтальные (непроходные (однодверные) и проходные (двухдверные));

3) электронный (с полной автоматизацией всего цикла стерилизации) и механический;

4) автоматический, полуавтоматический и ручной.

3. Ультрафиолетовые стерилизаторы.

4. Пароформалиновые камеры.

5. Гласперленовые стерилизаторы.

Дополнительное оборудование.

1. Дестиляторы и деминерализаторы воды.

2. Упаковочные машинки.

3. Биксы, контейнеры для инструментов.

Процесс дезинфекции должен проводиться под контролем проб на скрытую кровь и наличие моющего средства, а непосредственно стерилизация контролируется препаратами мочевины и специальными термоиндикаторными полосками. Это позволяет добиться высокого качества данных мероприятий и обеспечить полное уничтожение микроорганизмов и их спор.

Дата добавления: 2014-11-25